Leukocyttall

Tellermetoden i kameraet. Taking og fortynning av blod produsert av rørmetoden. 0,4 ml fortynningsvæske og 0,02 ml kapillærblod innføres i røret (fortrinnsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynning anses praktisk talt for å være 1:20. En 3-5% løsning av eddiksyre tonet med metylenblå brukes vanligvis som fortynningsmiddel (eddiksyre lyses erythrocytter, metylenblå flekker kjernene til leukocytter). Før fylling av kammeret Goryaeva rør med fortynnet blod rystes grundig. Kammeret er fylt på samme måte som for rødt blodcelletelling.

Leukocytter er mye mindre enn erytrocytter (1-2 pr. Stor firkant), derfor, for nøyaktighet, blir tallene gjort i 100 store firkanter (ungraded). Beregning: 100 store firkanter (1600 små) regnes som en leukocyt.
Husk at volumet av et lite torg er 1/4000 mm3, og blodet fortynnes 20 ganger, antall leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 20 og delt med 1600 = a x 1/2. For å oppnå det virkelige innholdet av leukocytter i 1 μl blod, er det tilstrekkelig å dele i halvparten av tallet som er oppnådd i beregningen, og legge til 2 nuller. Den gjennomsnittlige metoden feil er ± 7%.

Mer nøyaktig (2-3% feil) og perfekt er tellingen av leukocytter ved hjelp av elektroniske enheter. Telling av leukocytter i partikkel tellere utføres i henhold til samme prinsipp som erytrocytter. Forblod er fortynnet og blandet med noen reagenslysering av røde blodlegemer. Den autoanalysator "Technion" som sådan anvendes eddiksyre, i apparaturen "Coulter" og "Tselloskop" - saponin eller sapoglobin som legger fortynnet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumklorid-løsning (6 dråper pr 20 ml fortynning).

Blodleukocyttelling utføres i farget perifer blodutstryk.
Det er bedre å telle på det tynneste punktet nær smørets ende, minst 200 celler (unntatt uttalt leukopeni), og deretter utlede prosentandelen av visse typer hvite blodlegemer. Telling er anbefalt i den samme rekkefølgen: halvparten av celletallet i den øvre halvdel - ved bunnen av slaget, uten å gå til kanten og midten av sikksakk (3-4 syn langs smøre, 3-4 felt vinkelrett inn mot midten av slaget, så 3-4 felt til siden parallelt med kanten, igjen vinkelrett oppover og så videre til den ene siden).

Utarbeidelse av smører. Nøye vasket og avfettet glass (kanten) berører en dråpe blod på injeksjonsstedet. Smøre gjør slipeskjerm, legg det i en vinkel på 45 ° til lysbildet foran dråpen. Etter å ha tatt glasset til denne dråpen, venter de til blodet sprer seg langs kanten, og med en rask, enkel bevegelse utfører de slipeglasset fremover, ikke tar det bort fra motivet før det tørker hele dråpen.

Et skikkelig smurt har en gulaktig farge (tynn), når ikke glassets kanter og slutter i et spor (bart).

Fargestørrelser fremstilt etter foreløpig fiksering. Den beste fikseringen oppnås i absolutt metylenalkohol (3-5 minutter) eller i en blanding av Nikiforov med like deler av absolutt etanol og eter (30 minutter).

De viktigste hematologiske malingene inkluderer metylenblå og dets derivat - azurblå I (metylen azurblå) og azurblå II (en blanding av like deler azurblå I og metylenblå), til surt - vannoppløselig gul eosin.

● Maleri av Romanovsky-Giemsa. Romanovsky-Giemsa-maling (fabrikk-laget) har følgende sammensetning: Azur II - 3 g, vannløselig gul eosin - 0,8 g, metylalkohol - 250 ml og glyserin - 250 ml. Arbeidsmalingløsningen fremstilles ved en hastighet på 1,5-2 dråper ferdig maling per 1 ml destillert vann. Malingen helles på et smør med et muligens høyere lag; fargetid - 30-35 minutter Etter denne perioden vaskes vattpinnen med vann og tørkes i luft. I denne metoden er det mulig å differensiere kjernen godt, men cytoplasmens neutrofile granularitet er mye verre, så det er mye brukt til å fargelegge et perifer blodsprøyt.

● Kombinert May-Grunwald-Romanovsky-Giemsa-fargestoff ifølge Pappenheim. Et ferdig fargestoff, et mai-Grunwald-fiksativ, som er en løsning av eosinmetylenblå i metylenalkohol, pipetteres på et fast smear i 3 minutter. Etter 3 minutter tilsettes en lik mengde destillert vann til malingen som dekker oppløsningen, og fargen fortsetter i ytterligere 1 minutt. Etter det blir maling vasket av og smeten tørkes i luften. Deretter blir det tørkede smearet malt med en nytilberedt vandig løsning av Romanovsky-maling i 8-15 minutter. Denne metoden regnes som den beste, spesielt for smører av marrow punctates.

En økning i antall leukocytter i det perifere blod over det normale nivå kalles leukocytose, en reduksjon kalles leukopeni. Leukocytose (leukopeni) kjennetegnes sjelden av en proporsjonal økning (reduksjon) i antall leukocytter av alle slag, for eksempel leukocytose med fortykning av blodet. I de fleste tilfeller er det en økning i antall (reduksjon) av en hvilken som helst celletype. Økningen eller reduksjonen i antall individuelle typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolutt, avhengig av totalt leukocyttall - normalt, forhøyet eller redusert. Endringen i antall, forholdet mellom individuelle former og morfologi av leukocytter avhenger av patogenens type og virulens, naturen, kurset og omfanget av den patologiske prosessen, den individuelle reaksjonen av organismen.

Telling av antall leukocytter og blodplater

Faktorer som påvirker korrektheten av studien av hvite blodlegemer

- lang lagring av blod ved romtemperatur

Norm av innholdet av leukocytter i blodet

Alder Antall leukocytter

- 1 dag 11,6 - 22,0

- 1 uke 8,1.- 14,3

- 1 måned 7,6 - 12,4

- Voksne 4,0 - 9,0

Metoder for å bestemme antall leukocytter i blodet.

- Teller antall leukocytter i tellekammeret

- Telle leukocytter i hematologiske analysatorer

Bestemme antall leukocytter i tellekammeret.

- Telling av leukocytter under et mikroskop utføres etter lysering av røde blodceller i 100 store firkanter av tellegitteret og omberegnet for 1 liter blod, basert på volumet av kvadrater og fortynning av blod. Tellingen av leukocytter bør gjøres innen 2-4 timer etter blodinnsamling.

- Hvis det er nukleerte røde blodlegemer i perifert blod, blir de ikke lysert og telt sammen med leukocytter. I dette tilfellet, for å bestemme det sanne antall leukocytter, blir antall celler i den røde raden subtrahert fra det totale antall tellte celler.

- For eksempel: Det totale antall leukocytter i beregningen i kammeret (eller analysatoren) -45x109 / l. Ved beregning av leukocytformelen ble det funnet at 50 erythroblaster (normoblaster) er tilstede per 100 leukocytter.

Vi beregner det sanne antall leukocytter i blodet:

150 celler - 45 x 109 / l

100 celler (leukocytter) - X

X = 100 * 45 * 10 / l / 150 = 30 * 10 / l

Således er det sanne antall leukocytter i blodet 30 x 109 / l.

De viktigste kildene til feil i beregningen av leukocytter i kammeret:

- Feil forhold mellom blod og eddiksyre volumer tatt i et reagensrør.

- Feil forberedt løsning av eddiksyre (i en konsentrasjon på mer enn 5%, kan noen leukocytter lyse, noe som vil føre til en undervurdering av resultatet).

- Langvarig eksponering av prøven ved temperaturer over 28 ° C, noe som kan akselerere lysen av leukocytter i prøven og føre til en underskatt av resultatet.

- Feil fylling av Goryaev-kammeret. Som med beregning av røde blodlegemer, må kameraet stå i 1 minutt for å slå seg opp i cellene.

- Goryaev-kameraet ble ikke vasket godt nok etter den forrige definisjonen. Leukocytter som er igjen i kammeret kan overvurdere resultatene av analysen.

Blodplate teller metoder

- i teltkammeret

Hver gruppe metoder har fordeler og ulemper.

- Telling av blodplater i kammeret er tilstrekkelig nøyaktig, krever ikke å beregne antall røde blodceller. På den annen side er denne metoden vanskeligere, siden blodplater i den innfødte formen er representert av små og dårlige kontrastelementer. Ulempen med metoden er blodplate telling i de kommende timene etter å ha tatt blod.

- Fastsettelse av antall blodplater i blodutløp er signifikant dårligere i nøyaktigheten av kammermetoden eller automatiske tellere. Feil ved å telle i blodutslipp kan skyldes dårlig smetekvalitet og tilhørende ujevn fordeling av blodplater, unøyaktig bestemmelse av antall røde blodlegemer. En signifikant ulempe ved fremgangsmåten er nødvendigheten av samtidig å telle blodplater og røde blodlegemer i blodet. Fordelen med det er evnen til å studere blodplater når som helst, uansett tidspunktet for blodsamlingen.

- Metoden for å bestemme blodplater ved hjelp av en hematologisk analysator lar deg nøyaktig bestemme antallet blodplater, deres gjennomsnittlige volum og volumfordeling.

Metode for å telle leukocytter i Goryaev-kammeret

Hvite blodceller - hvite blodlegemer - spiller en viktig rolle i den antimikrobielle beskyttelsen av kroppen. Granulocytter fagocytiserer mikrober og ødelegger dem ved hjelp av enzymer som er innesluttet i granulat; lymfocytter produserer antistoffer og gir immunrespons til kroppen.

Metoden for å bestemme testrørmetoden: Häll i et reagensrør 0,4 ml av en oppløsning av Türk (Türks væske inneholder eddiksyre for å ødelegge røde blodlegemer og metylenblått for farging av kjerner av leukocytter). Bruk en kapillærpipett til å trekke 0,02 ml blod fra en frisk dråpe, forsiktig blåse den inn i et reagensrør med et reagens og skyll pipetten. Bland godt. Samtidig er blodfortynning 20 ganger. En dråpe fortynnet blod samles på enden av en rund glassstang og påføres på kanten av et polert glasskammer.

Telling utføres i 100 store ubrukte firkanter, satt sammen av fire. Brukt en liten økning.

Utledningen av telleformelen nummer 1.

1. 100 firkanter inneholder 1600 små firkanter (16x 100)

2. Blodvolum over liten firkant 1/4000 mm3

3. Fortynning av blod 20 ganger

Antall leukocytter i 1 μl blod = ved -4000-20. = Ax 50

For eksempel: 130 leukocytter ble telt i 100 store firkanter av Goryaev-nettet. I 1 μl blod vil antall leukocytter være 130 x 50 = 6500 eller 6,5-10 3.

For å bestemme innholdet av leukocytter i 1 liter blod, må antall leukocytter, uttrykt i tusen, multipliseres med 10 9.

I vårt eksempel er antallet leukocytter i 1 liter blod 6,5-10 9.

194.48.155.245 © studopedia.ru er ikke forfatter av materialene som er lagt ut. Men gir mulighet for fri bruk. Er det et brudd på opphavsretten? Skriv til oss | Kontakt oss.

Deaktiver adBlock!
og oppdater siden (F5)
veldig nødvendig

Leukocytter (leukocytter)

Leukocytter. Kvantitativ bestemmelse av leukocytter. Telle leukocytter ved hjelp av kameraet Goryaeva. Kvantitativt innhold av leukocytter. Leukocytose.

Hvite blodlegemer

Antall leukocytter i blod avhenger av hastigheten av deres dannelse og deres mobilisering fra benmargen, så vel som utvinning og migrering inn i vev (skade foci), å fange opp lys og milt. Disse prosessene i sin tur påvirkes av en rekke fysiologiske faktorer, og derfor antallet av leukocytter i blod fra en frisk person er utsatt for svingninger: det stiger mot slutten av dagen, under fysisk anstrengelse, emosjonelt stress, mottak proteinrik mat, en skarp endring i omgivelsestemperaturen.

Kvantitativ bestemmelse av leukocytter

Leukocytter teller ved hjelp av Goryaev-kameraet og bruker automatiske tellere.

Telle leukocytter ved hjelp av kameraet Goryaeva

Med in vitro-metoden for å ta blod for å telle leukocytter:

• 0,4 ml av en oppløsning av 3-5% eddiksyre tonet med metylenblått helles i røret. Bruk en kapillærpipette til å tegne 20 μl blod fra en frisk dråpe (fortynning 20 ganger), skru den forsiktig inn i et reagensrør med et reagens og skyll pipetten. Bland godt
• et rent og tørt dekselglass gnides på kammeret slik at regnbuens ringer danner ved kontaktpunktet;
• Blod fortynnet i et reagensrør, bland godt. Enden av en rund glassstang tar en dråpe blod og bringer den til kanten av kammerets polerte glass;
• Etter fylling av kammeret blir det igjen i 1 min i ro for sedimentering av leukocytter;
• Leukocytter vurderes ved lav forstørrelse (objektiv × 8 eller × 9, okular × 10 eller × 15) med mørkret synsfelt (med nedsenket kondensator eller innsnevret membran);
• For tilfredsstillende resultater teller leukocytter i 100 store firkanter.

Å vite volumet av et stort torg og graden av fortynning av blod, finner antall leukocytter i 1 μl og 1 1 blod. Siden av det store torget er 1/5 mm, området er 1/25 mm2, volumet av plass over dette torget er 1/250 mm3.

Formel for å telle hvite blodlegemer:

hvor B er antall leukocytter i 100 store firkanter;
P - grad av fortynning (20).

Leukocyttall

Norm: 4,0-9,0 × 10 9 / L

Økningen i antall leukocytter over 9,0 × 10 9 / l kalles
leukocytose, en nedgang i antallet under 4,0 × 10 9 / l - leukopeni. Imidlertid kan selv 3,5 × 10 9 i 1 liter leukocytter for en rekke individer være normen. Ifølge litteraturen har slike personer økt immunmotstand og de er mindre sannsynlige å bli syke, noe som synes å skyldes behovet for et immunrespons å ha en reserve av leukocytter i vev, hvor det er 50-60 ganger mer enn i blodet. Åpenbart, hos friske personer med lave hvite blodlegemer i perifert blod, øker deres reserver i vev tilsvarende. Dette fenomenet forklares av arvelig og familiær karakter eller ved en økning i påvirkning av det parasympatiske nervesystemet.

Leukopeni kan være funksjonell og organisk.
Funksjonell leukopeni er assosiert med dysregulering av bloddannelse og observeres:

• med enkelte bakterielle og virusinfeksjoner (tyfusfeber, influensa, kopper, røde hunder, Botkin's sykdom, meslinger);
• under virkningen av stoffer (sulfonamider, analgetika, antikonvulsiva midler, antithyroid, cytostatiske og andre legemidler);
• under muskelarbeid, innføring av fremmed protein, nerve og temperatureffekter, sult, hypotoniske tilstander;
• falsk leukocytopeni kan være assosiert med leukocytt aggregering ved langvarig lagring av blod ved romtemperatur (mer enn 4 timer).

Organisk leukopeni som følge av benmarg aplasi og erstatning med fettvev, oppstår når:

• aplastisk anemi
• agranulocytose;
• leukopenisk leukemi;
• noen former for Hodgkin's sykdom;
• ioniserende stråling;
• hypersplenisme (primær og sekundær);
• kollagen sykdommer.

leukocytose

Leukocytose er reaksjonen av det hematopoietiske systemet til effektene
eksogene og endogene faktorer. Det er fysiologisk og patologisk leukocytose.

Fysiologisk leukocytose er:

• fordøyelsessystemet - etter å ha spist, spesielt høyt i protein; antall leukocytter overstiger ikke 10,0-12,0 × 10 9 / l og etter 3-4 timer vender det tilbake til normalt;
• i henhold emosjonelt stress (avgivende epinefrin), tung fysisk belastning, kjøling, dreven soling (solbrenthet), innføring av en rekke hormoner (katekolaminer, glukokortikoider og al.), i den andre halvdel av graviditet og i løpet av menstruasjonen og som skyldes ujevn fordeling av leukocytter i blod den vanlige.

Patologisk leukocytose er delt inn i absolutt og relativt.

Absolutt leukocytose - en økning i antall leukocytter i blodet opptil flere hundre tusen (100,0-600,0 × 10 9 / l og mer).

• Mest sett i leukemi: i kronisk leukemi - i 98-100% av tilfellene, ved akutt leukemi - i 50-60%. Endring av forholdet mellom leukocyttceller i beinmarg og blodpunkta tjener som grunnlag for diagnosen leukemi.

Relativ leukocytose er observert:

• akutt betennelses- og smittsomme prosesser, med unntak av tyfusfeber, influensa, kopper, rubella, Botkin's sykdom, meslinger. Den største leukocytose (opptil 70,0-80,0 × 10 9 / l) observeres i sepsis;
• under påvirkning av giftige stoffer (insektgift, endotoksiner), ioniserende stråling (umiddelbart etter bestråling);
• som et resultat av virkningen av kortikosteroider, adrenalin, histamin, acetylkolin og digitalispreparater;
• med vevsoppløsning (nekrose), myokardinfarkt, trombose av perifere arterier med utvikling av gangrene, brannsår, ekssudativ pleurisy, perikarditt, uremi, hepatisk koma;
• betydelig blodtap i skader, indre, gynekologisk og annen blødning.

Økningen i antall leukocytter i smittsomme sykdommer i de fleste tilfeller er ledsaget av et skifte av leukocytformelen til venstre

Leukocyttall

Antall leukocytter beregnes ved hjelp av en automatisk teller eller i et Goryaev-kammer. For å telle leukocytene i kammeret fremstilles en Turk væske. En eddiksyreoppløsning tonet med en vandig løsning av metylenblått (0,1 ml av en 0,1% løsning av metylenblå blir tilsatt til 9 ml 10% eddiksyre). I et reagensrør hell 0,4 ml flytende Türk. Oppnå nøyaktig 0,02 ml blod, legg forsiktig til fortynningsvæsken. Fortynning av blod er 1:20. Bland godt og la i 4 minutter. Fyll kammeret Goryaeva, etter omhyggelig risting av røret med fortynnet blod. Kameraet er igjen i 1 min på en flat overflate for sedimentering av leukocytter. Deretter telles leukocytter ved lav forstørrelse av mikroskopet (linsen 8, okularet 10 eller 15) med mørkret synsfelt (med kondensatoren senket eller den innsnevrede membranen). Leukocytter anses å være i 100 ikke-avslørte store firkanter, som tilsvarer 1600 små. Resultatene av å telle celler i store firkanter oppsummerer og beregner tallet i 1 μl blod ved hjelp av formelen:

hvor X er antall leukocytter i 1 μl blod; A - antall celler telt i 100 store firkanter, 1600 - antall små firkanter; 20 - blodfortynning; 4000 er en multiplikator som resulterer i et volum på 1 μl blod, basert på volumet av en liten firkant (1/4000 μl).

Telling av leukocytformel. Fargede perifere blodpropper undersøkes. En nødvendig betingelse for riktig vurdering av de morfologiske egenskapene til blodceller er en skikkelig gjort og godt flekket blodsmøring. Et blodsprøve fremstilles på tørre, rene, godt avfettede lysbilder, alderen i en blanding av Nikiforov (etylalkohol 96 º og dietyleter 1: 1). Ta en glidelås for lange kanter, berør overflaten til en dråpe blod (men ikke hud) som frigjøres fra punkteringen, eller bruk en bloddråpe med en mikropipett eller en kapillær. Et glassglass holdes på bordet eller i venstre hånd for smale kanter. Ved å bruke høyre hånd, bruk grunnglasset med en smal kant til glasset med blod til venstre for dråpen i en vinkel på 45 ° og skyv den til høyre til den berører blodet. De venter til blodet sprer seg over hele kanten av bakken glass, og deretter, med en rask, rask bevegelse, før den fra høyre til venstre til hele dråpen er oppbrukt. En dråpe blod skal være liten og proporsjonert slik at hele smøret settes på glasset, ikke når 1-1,5 cm før kanten. Et godt smurt er tynt, har en gulaktig farge og ender i en "kost". Lufttørkede blodsprøyter plasseres i spesielle retter til fiksering eller i vanlige glassfill fyllt med fikseringsvæske (metylalkohol, fikseringstid 3-5 minutter, etylalkohol, 30 minutter, Nikiforov-blanding, 20-30 minutter). Faste preparater tørkes i luften og farves deretter med Romanovsky-Giemsa-fargestoff. Den ferdige malingsløsningen Romanovsky-Giemsa (azureosin) fortynnet 1:10 i ønsket volum for farging. Faste smørstoffer helles med fortynnet maling, som helles på smøret med et muligens høyere lag. Coloring varer avhengig av lufttemperaturen i rommet fra 25 til 45 minutter. Etter at malingen er ferdig, må du tørke av maling med destillert vann og sette stropper vertikalt i en trestativ for tørking. Mikroskopi av blodutsprøytninger utføres med nedsenkning ved 100 × 10 forstørrelse. Telling av leukocytter utføres langs en zigzaglinje ("Meander line"). 100-200 celler regnes med hensyn til antall individuelle former for leukocytter: stab og segmenterte neutrofiler, eosinofiler, basofiler, monocytter, lymfocytter. Beregn prosentandelen av hver celletype.

Telling av absolutt antall fagocytter og lymfocytter. Det absolutte antall fagocytter (nøytrofiler og monocytter) og lymfocytter hos høyere vertebrater beregnes ut fra data på antall leukocytter i perifert blod og leukocytformel.

Fagocytisk funksjonstest

Bestemmelse av fagocytisk indeks og fagocytisk nummer

Et stort antall teknikker har blitt utviklet for å vurdere leukocytters absorpsjon og fordøyelsesaktivitet. Alle er basert på phagocytes evne til å absorbere fremmede partikler som utgjør testsystemet (en bestemt type mikroorganisme, zymosan, latex - gjenstand for absorpsjon). Åpenbaringen utføres in vitro eller in vivo. Det generelle forsøksforløpet er som følger: Heparinisert eller citrert friskt blod (eller fagocyttoppløsning) blandes med et like stort volum suspendert daglig mikrobial suspensjon (Saccharomyces cerevisiae, Staphilococcus aureus, S. albus, E. coli, A. nhydrophila) eller et annet absorpsjonsobjekt. Blandingen blandes forsiktig og plasseres i en termostat (37-40ºі - for varmblodig, avhengig av kroppens normale temperatur, 26 ° C - for varmelskende fisk og lavere for kaldt kjærlig). Etter 15, 30, 45, 60 og 90 minutter er smørefargene tilberedt på lysbilder, tørket, festet med metylalkohol eller en Nikiforov-blanding og farget i henhold til Romanovsky-Giemsa. De ser på smører under nedsenking og bestemmer fagocytisk aktivitet - andelen fagocytter som deltar i fagocytose, fagocytisk indeks - antall testmikroer fanget av en fagocytisk leukocytt, fagocytisk tall - gjennomsnittlig antall fagocytiske gjenstander per 1 aktiv nøytrofil. Evaluering av indikatorer ved forskjellige tidsintervaller gir oss mulighet til å estimere dynamikken i fagocytose. Normalt, etter 90 minutter, skal fagocytindeksen være lavere enn etter 45 minutter og 60 minutter på grunn av fordøyelsen av mikrober. Ved brudd på fordøyelsen endres det ikke.

Vurdering av den funksjonelle aktiviteten av fagocytter ved reduksjonsreaksjonen av nitroblåttetrazol (NBT-test)

Denne testen er en indikator for fagmaktens bakteriedrepende funksjon, og lar deg evaluere deres evne til oksygenavhengig drap. Når denne drapemekanismen er aktivert aktiveres enzymet NADPH-oxidase, hvilket fører til utseendet av reaktive oksygenarter i fagocyt. Utgivelsen av slike stoffer i cellen kalles en oksygen (respiratorisk) eksplosjon, som kan registreres ved hjelp av NBT-testen. I formuleringen av denne testen blir stoffet nitrosiniumtetrazolium tilsatt fagocytene, det absorberes av cellen og i nærvær av reaktive oksygenarter blir det en mørk blå farget substans, diformazan. Jo mer mørkeblå granulater er festet på overflaten eller inne i fagocytten, desto mer aktive oksygenformer dannes, jo mer oksygenavhengige drap.

NBT-testen er satt i to versjoner: spontan og indusert. Når man oppretter en spontan NBT-test, dyrkes fagocytter i nærvær av NST uten forutgående aktivering av cellene, når man utfører den induserte NBT-test, tilsettes en aktivator av fagocytisk reaksjon til dyrkningsmediet. Formulering NBT test i de to utførelsesformer tillater beregning av funksjonelle reserve-celler, som er forskjellen mellom antall (intensitet) diformazanpozitivnyh induserte celler og mengden (intensiteten) av spontane diformazanpozitivnyh celler. Verdier indusert NBT test karakterisere aktiviteten av fagocytiske celler i nærvær av antigen stimulus, og er ansett som kriterium for deres tilgjengelighet til det ferdige fagocytose. Den spontane NBT-testen tillater en å estimere graden av aktivering av oksygenavhengige drapemekanismer av ikke-aktiverte fagocytter. Det karakteriserer graden av aktivering av intracellulære mikrobicide systemer.

For fremstilling av spontan NBT-test til 0,1 ml blod ble det tilsatt 0,05 ml av en 0,2% oppløsning av HCT i kaliumfosfatbuffer (0,1 pH 7,3) og 0,05 ml av den samme buffer. Parallell for å gi en prøve for regnskapsmessig indusert NBT-test, hvor det istedenfor 0,05 ml buffer ble tilsatt det samme volum av aktivator fagocytisk reaksjon (f.eks pirogenal vkontsentratsii 50 ug / ml). Reaksjonsblandingen termosteres i et vannbad ved 37 ° C (30-60 minutter). Medium tetthetstråler fremstilles, tørkes i luft og festes i etylalkohol eller Nikiforov-blanding (20 min), deretter malt med en vandig løsning av nøytralt rødt (0,1%, 1 min)

Etter reaksjonen blir blodsprøytene mikroskopert under nedsenking (100 × linse, 10 × okular). Blant 100 celler regnes andelen aktiverte nøytrofiler (DAN,%) som inneholder diformazangranuler. I henhold til antall deponert i celler diformazan vurdere deres aktivitet i standard enheter og beregne indeksen aktivering av nøytrofile celler (IAN, standard-enheter):

hvor er H_neg. - antall celler som ikke inneholder diformazan granulat;

H₁ - antall celler hvor området diformazan-innskudd er mindre enn 1/3 av arealet av kjernen;

H₂ - antall celler hvor forekomster av diformazan tar fra 1/3 til hele størrelsen av kjernen;

H₃ - Antall celler hvor diformazan-innskudd opptar et større område av kjernen.

Derivasjonen av mobiliseringskoeffisienten (KM) utført i henhold til følgende formel:

Bestemmelse av leukocytter i blodet

Innholdet i artikkelen

• Bestemmelse av leukocytter i blodet
• Hva er leukocytter for?
• Hva er frekvensen av den generelle analysen av blod hos kvinner

Antall leukocytter i blodet

Det er ikke fast fast antall leukocytter, som vil bli ansett som normen for alle mennesker. Denne figuren varierer med alderen på personen: jo eldre personen, jo mindre antall leukocytter i blodet hans. Det normale antallet leukocytter i en nyfødt baby er 9-30x109 / l. I en voksen er denne figuren tre ganger mindre - 4-9x109 / l. Indikatoren for mengden av disse partiklene i blodet kan avvike noe fra normen avhengig av kroppens funksjonelle tilstand og til og med tidspunktet på dagen.

Så i blodet av gravide er det et økt antall leukocytter. Normen øker i første gang etter et måltid, etter trening, med overoppheting og avkjøling. Men hvis antall partikler øker tre ganger mer enn normen, så er dette et signal om en sykdom som utvikler seg i kroppen.

En tilstand hvor kroppen har et høyt innhold av leukocytter kalles leukocytose, og omvendt tilstand kalles leukopeni. Det skal bemerkes at kvaliteten på blodprøvetaking for analyse sterkt påvirker antall leukocytter: prosedyren må alltid utføres på tom mage.

Hvordan bestemme antall leukocytter

For å bestemme nivået av leukocytter på flere måter: ved å donere blod, smøre, urin eller sæd.

Det er svært viktig å overvåke nivået av hvite blodlegemer i urinen under graviditeten. Høye priser indikerer tilstedeværelsen i kroppen av en kvinne som bærer et barn, inflammatoriske prosesser, for eksempel pyelonefrit eller cystitis.

Ikke glem at det endelige resultatet av analysen avhenger av riktig oppførsel. Derfor reanalyseres leger før de foreskriver noen sterke legemidler til en gravid kvinne.

Følgende prosedyre brukes til å lese antall leukocytter i blodet, sæden eller urinen. En viss del av væsken plasseres i apparat-sentrifugen. Bunnfallet påføres glasset og undersøkes under et mikroskop. For å telle antall leukocytter blir sedimentet farget ved hjelp av et spesielt fargestoff. Deretter beregnes det tilsynelatende antall leukocytter i synsfeltet.

Hvis analysen viste en avvik fra det normale hvite blodlegemetall, er det nødvendig å finne ut årsaken til økningen i antall partikler. Noen sykdommer diagnostiseres ved å sjekke antall hvite blodlegemer.

Leukocytter, deres antall og hovedgrupper. Metoder for å bestemme antall leukocytter. Leykoformula og dens verdi.

Leukocytter Norm - (4-9) x109 / l blod. Deres mengde er avhengig av hastigheten for dannelse av lymfeknuter, milt og benmarg mobilisere benmargen utvinning og migrering inn i vev fangst lys og milt, fysiologiske faktorer. Hovedfunksjonen til granulocytter (spesielt nøytrofil) fagocyttisk - fangst og fordøyelse ved hjelp av hydrolytiske enzymer av fremmede materialer. Ved vurdering av antall leukocytter i klinikken benyttes leukocyttformel - prosentandelen av individuelle former for leukocytter. Normalt er denne verdien konstant.

Leukocytformel

Økningen i antall leukocytter til flere titusener indikerer leukocytose og er observert i akutte inflammatoriske og smittsomme sykdommer, ledsaget av et skifte av leukocyttformelen til venstre. En økning i antall leukocytter til flere hundre tusen poeng til leukemi. Ved alvorlige smittsomme sykdommer endres den neutrofile morfologien: degranulering, vakuolisering etc. observeres. En reduksjon i antall leukocytter under 4000 indikerer leukopeni, oftere agranulocytose. Reduksjon av antall hvite blodlegemer kan være forbundet med bruk av ulike legemidler, økt radioaktiv bakgrunn, urbanisering etc. Neutropeni manifesteres under påvirkning av cytostatika, med lupus, revmatoid artritt, malaria, salmonella, brucellose, som et spesifikt syndrom - med aids og stråling.

Neutrofile leukocytter. Innhold i blodet - 50-75% (2,2-4,2) x109 / l. Diameter -10-12 mikron.

Kjernen er kompakt, består av 3-4 segmenter, forbundet med broer; cytoplasma med rikelig grus. I infeksjoner og betennelser utfører nøytrofile funksjonen til makrofager - celler som er i stand til fagocytose.

Leukocytter er eosinofile. Hastigheten er 1-5% av leukocytter, (0,1-0,3) x109 / l. Celler større enn nøytrofiler, opptil 12 mikrometer i diameter. Kjernen består ofte av 2-3 segmenter. Cytoplasma er svakt basofile, inneholder en stor, lyst farget med eosin korn, noe som gir en positiv oksidase, peroksidase, cytokromoksydase, suktsinatdegidrogenaznuyu, kislofosfataznuyu reaksjon. I stand til fagocytose og delta i avgiftning produkter proteinnatur og allergiske reaksjoner organizma.Eozinofiliya karakteristisk for helminthiasis, er det mulig på det stadium av utvinning av infeksjonssykdommer.

Leukocytter basofile. Innhold i blodet - 0-1% (opptil 0,06 x109 / l). Diameter er fra 8 til 12 mikron. Kjernen er bred, uregelmessig formet. Kytoplasma inneholder et stort korn som flekker metakromatisk i fiolett-svarte toner. Delta i allergiske reaksjoner (umiddelbare og forsinkede typer): Histamin og heparin (en gruppe heparinocytter) produseres.

Monocytter / makrofager. Hastigheten er 2-10% av leukocytter, (0,2-0,55) x109 / l. Størrelser fra 12 til 20 mikron. Kjernen er stor, løs, med en ujevn fordeling av kromatin. De sirkulerer ikke i blodet for lenge, passerer inn i vev, forvandler seg til makrofager, som er i stand til å bevæge seg i bevegelse. Ledende celler av kroppens immunrespons. Hovedfunksjonen er endocytose. De er den sentrale lenken til det mononukleære fagocytiske systemet. En rekke cytokinavhengige funksjoner utføres: hematopoietisk, immunostimulerende, proinflammatorisk, immunosuppressiv og antiinflammatorisk.

Makrofag sekresjonsprodukter:

Proteaser: plasminogenaktivator, kollagenase, elastase, angiotensinkonvertase.

Mediatorer av betennelse og immunmodulasjon: interleukin-1 (IL-1), tumornekrosefaktor a, interferon y, lysozym, nøytrofilaktivering faktor, komplementkomponenter C1, C2, C3, C5, properdin, faktorer B, D, IL-3, IL -6, IL-8, IL-10, IL-12, IL-15.

Vekstfaktorer: CSF-GM, CSF-G, CSF-M, fibroblastvekstfaktor, transformerende vekstfaktor.

Koagulasjonsfaktor og fibrinolysehemmere: V, VII, IX, X, plasminogenhemmere, plasminhemmere.

Limemidler: fibronektin, trombospondin, proteoglykaner.

Kamera Counting Metode

Taking og fortynning av blod produsert av rørmetoden. 0,4 ml fortynningsvæske og 0,02 ml kapillærblod innføres i røret (fortrinnsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynning anses praktisk talt for å være 1:20. En 3-5% løsning av eddiksyre tonet med metylenblå brukes vanligvis som fortynningsmiddel (eddiksyre lyses erythrocytter, metylenblå flekker kjernene til leukocytter). Før fylling av kammeret Goryaeva rør med fortynnet blod rystes grundig. Kammeret er fylt på samme måte som for rødt blodcelletelling.

Leukocytter er mye mindre enn erytrocytter (1-2 pr. Stor firkant), derfor, for nøyaktighet, blir tallene gjort i 100 store firkanter (ungraded).

Beregning: 100 store firkanter (1600 små) regnes som en leukocyt. Husk at volumet av et lite torg er 1/4000 mm 3, og blodet fortynnes 20 ganger, antall leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 * 20 og divisjonert med 1600 = a * 1/2. For å oppnå det virkelige innholdet av leukocytter i 1 μl blod, er det tilstrekkelig å dele i halvparten av tallet som er oppnådd i beregningen, og legge til 2 nuller. Den gjennomsnittlige metoden feil er ± 7%.

Mer nøyaktig (2-3% feil) og perfekt er tellingen av leukocytter ved hjelp av elektroniske enheter. Telling av leukocytter i partikkel tellere utføres i henhold til samme prinsipp som erytrocytter. Forblod er fortynnet og blandet med noen reagenslysering av røde blodlegemer. I analysatoren "Technicon" som sådan, bruk en oppløsning av eddiksyre i apparatet "Culter" og "Celloskop" - saponin eller sapoglobin, som tilsetter fortynnet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumkloridoppløsning (6 dråper per 20 ml fortynning).

12. Funksjoner av granulocytter. T-og B-lymfocytternes rolle i etableringen av spesifikke immunitetsmekanismer:

Hovedcellene i immunforsvaret er T- og B-lymfocytter som sirkulerer i blodet og lymfesystemet, og beveger seg hele tiden fra et organ i immunsystemet til andre, har muligheten til å gå ut i vev for å utføre beskyttende funksjoner (figur 1).

I beskyttelsesreaksjoner av spesifikk immunitet, i tillegg til T- og B-celler, virker fagocytiske celler (granulocytter, monocytter, makrofager), "naturlige drepere", mastceller, endotel- og epitelceller, som spiller rollen som hjelpeceller, interaksjon med T- og B-celler. lymfocytter.

Immunresponsen består av en kompleks serie av cellulære interaksjoner, aktivert ved inntak av fremmed antigenmateriale. Først fanger makrofagen kroppen som bærer antigenene. Deretter fjerner makrofagen en del av antigenet (peptidet) og viser det på overflaten, som om det presenteres for immunceller. Aktivering av en lymfocytt av et antigen fører til proliferasjon og transformasjon av lymfocytter.

Lymfocytter er de eneste cellene i kroppen som er i stand til spesifikt å gjenkjenne sine egne og utenlandske antigener og reagere ved aktivering for å komme i kontakt med et bestemt antigen. Med en meget lignende morfologi er lymfocytter delt inn i to populasjoner, som har forskjellige funksjoner og produserer forskjellige proteiner.

En av populasjonene kalles B-lymfocytter. Hos mennesker utvikler B-lymfocytter i beinmargen. B-lymfocytter genkender antigener ved spesifikke immunoglobulinreceptorer, som, som B-lymfocytter blir modne, vises på deres membraner. B-lymfocytter er i stand til å gjenkjenne og binde protein-, polysakkarid- og lipoproteinoppløselige antigener. Hovedfunksjonen til B-lymfocytter er spesifikk anerkjennelse av antigenet. Anerkjennelsen av antigenet fører til aktivering, proliferasjon og transformasjon av B-lymfocytter til plasmaceller - produsenter av spesifikke antistoffer - immunoglobuliner. Således dannes et humoral immunrespons. B-lymfocytter trenger oftest T-lymfocytter i form av aktivering av cytokinprodukter for utvikling av den humoral immunresponsen.

En annen populasjon kalles T-lymfocytter på grunn av differensiering av deres forløpere i tymus. T-lymfocytter utfører den viktigste funksjonen av spesifikk anerkjennelse og binding av antigenet. T-lymfocytter aktivert med antigener proliferere og transformere til forskjellige subpopulasjoner som videre deltar i alle former for immunrespons. En aktivert T-lymfocyt produserer og sekreterer også cytokiner som forbedrer prosessen med å øke antall T-lymfocytter, B-lymfocytter og makrofager selv.

Blant de modne T-lymfocyttene er det to hovedpopulasjoner: T-hjelperceller (CD4 +) og T-killer-celler - cytotoksiske T-lymfocytter (CD8 +). Etiketten "CD" er karakteristisk for "celleoverflatefenotype" - "differensieringskluster" (fra engelske klynger av differensiering - CD).

Det er en annen type lymfocytter - store granulære lymfocytter, som avviger fra mindre T-celler og B-lymfocytter, ikke bare av strukturfunksjonene, men også av fravær av antigengjenkjenningsreseptor. Disse cellene kalles "naturlige drepere": de er i stand til å drepe målceller eller tumorceller infisert med ulike virus (se tabell 1).

Tabell 1. Klassifisering av humane lymfocytter

T-celler påvirker destruktivt følgende objekter:

1. Maligne celler.

2. Celler smittet med mikroorganismer.

3. Transplanterte organer og vev.

Hele cellen er involvert i angrepet, så svaret kalles mobil immunitet.

Dermed er det to hovedtyper av immunrespons:

· Cellulær immunitet er en funksjon av T-lymfocytter.

· Humoral immunitet - med deltagelse av B-lymfocytter.

Det er en annen subpopulasjon av T-lymfocytter: regulatoriske T-lymfocytter, T-regulerende celler Treg), T-suppressorer er sentrale regulatorer av immunresponsen. Deres hovedfunksjon er å kontrollere styrken og varigheten av immunresponsen gjennom regulering av funksjonen til T-effektorceller (T-hjelperceller og T-cytotoksiske celler).

Fig. 2. Generell plan for immunresponsen

Fenomenet med undertrykkelse av immunresponsen var kjent i lang tid, men mekanismene var ikke kjent. Derfor ble tilstedeværelsen av spesifikke T-suppressorceller foreslått, men eksistensen av disse cellene er ikke blitt bekreftet eksperimentelt i lang tid. Det var bare på slutten av 1990-tallet og tidlig på 2000-tallet at eksistensen av visse T-celler ble vist, som ble preget av fenotypen CD25 + FOXP3 + og effektivt undertrykket immunresponsen.

13. immunitet, dets ikke-spesifikke og spesifikke mekanismer:

Adaptiv (utdatert, oppkjøpt, spesifikk) immunitet har evnen til å gjenkjenne og reagere på individuelle antigener, karakteriseres av en klonal respons, lymfoidceller er involvert i reaksjonen, det er et immunologisk minne, er automatisk aggresjon mulig.

Klassifisert til aktiv og passiv.

• Ervervet aktiv immunitet oppstår etter å ha lidd en sykdom eller etter administrering av en vaksine.
• Oppnådd passiv immunitet utvikler seg når ferdige antistoffer blir introdusert i kroppen i form av serum eller overført til nyfødte med mors kolostrum eller prenatalt.

En annen klassifisering deler immunitet i naturlig og kunstig.

• Naturlig immunitet inkluderer medfødt immunitet og ervervet aktiv (etter sykdom), samt passiv immunitet i overføring av antistoffer til barnet fra moren.
• Kunstig immunitet omfatter oppkjøpt aktiv etter vaksinasjon (vaksineadministrasjon) og kjøpt passiv (serumadministrasjon).

Medfødt immunitet er forårsaket av evnen til å identifisere og nøytralisere ulike patogener i henhold til de mest konservative, felles for dem, spekter av evolusjonært slægtskap, før det første møtet med dem. I 2011 ble Nobelprisen i medisin og fysiologi tildelt for å studere nye mekanismer med medfødt immunitet (Ralph Steinman, Jules Hoffman og Bruce Byotler).

Det utføres for det meste av celler av myeloid-serien, har ikke streng spesifisitet for antigener, har ingen klonal respons, har ikke minne om primær kontakt med et fremmedlegeme.

14. Mononukleært fagocytisk system:

Systemet av mononukleære fagocytter (gresk monox en + lat. Nucleos-kjerne: Gresk pagoer som forteller, absorberer + gistol sutus-celle, synonym: makrofagsystem, monocyt-makrofagsystem) - det fysiologiske forsvarssystemet av celler med evne til å absorbere og fordøye fremmedlegemer. Cellene som utgjør dette systemet har en felles opprinnelse, er preget av morfologisk og funksjonell likhet og er tilstede i alle kroppens vev.

Grunnlaget for det moderne konseptet av systemet med mononukleære fagocytter er fagocytisk teori utviklet av I.I. Mechnikov på slutten av 1800-tallet, og undervisningen av den tyske patologen Aschoff (K.A.L Aschoff) om retikuloendotelialsystemet (RES). I utgangspunktet ble RES isolert morfologisk som et system av kroppsceller som er i stand til å akkumulere vitale farvestoffkarmin. På dette grunnlag ble bindevevshistocytter, blodmonocytter, Kupffer-celler i leveren, samt retikulære celler i bloddannende organer, endotelceller av kapillærer, bindevevsmuskene og lymfeknuter blitt tildelt RES. Med akkumulering av ny kunnskap og forbedring av morfologiske forskningsmetoder ble det klart at ideer om retikuloendotelialsystemet er vage, ikke spesifikke, og i en rekke bestemmelser ganske enkelt feilaktige. For eksempel ble i lang tid rollen som en kilde for fagocytiske celler tilskrevet retikulære celler og endotelet i bindekreftens og lymfeknuter, som viste seg å være feil.

Det er nå blitt fastslått at mononukleære fagocytter kommer fra sirkulerende blodmonocytter. Monocytter blir modne i beinmargen, og deretter inn i blodet, hvor de vandrer inn i vev og serøse hulrom, blir makrofager. Retikulære celler utfører en støttefunksjon og oppretter såkalt mikromiljø for hematopoietiske og lymfoide celler. Endotelceller transporterer stoffer gjennom kapillærveggene. Retikulære celler og vaskulært endotel er ikke direkte relatert til det beskyttende systemet av celler. I 1969, på konferansen i Leiden viet til problemet med REC, ble begrepet "retikuloendotelialt system" ansett for gammelt. I stedet vedtok det konseptet med et system av mononukleære fagocytter. Ved dette system består histiocytter bindevev, Kupffer-celler i leveren (stel retikuloendoteliotsity), alveolære makrofager, lungemakrofager i lymfeknuter, milt, benmarg, pleurale og peritoneale makrofager, osteoklaster i benvev, mikroglia nervevev synoviocytter synovialmembranene, hudceller Langergaisa, pigmentfrie granulære dendrocytter. Det er gratis, dvs. beveger seg gjennom vevene, og faste (resident) makrofager, som har et relativt permanent sted.

Makrofager og tekstiler serøse hulrom, ifølge scanning elektronmikroskopi, har en form nær sfærisk, med kornete foldet overflate som dannes av plasmamembranen (tsitolemmy). Under dyrkningsforhold spredes makrofager på overflaten av substratet og skaffer en flatt form, og under bevegelse danner de flere polymorfe pseudopodier.

Et karakteristisk ultrastrukturelt trekk ved en makrofage er tilstedeværelsen i sin cytoplasma av mange lysosomer og fagolysosomer eller fordøyelsesvakuoler. Lysosomer inneholder forskjellige hydrolytiske enzymer som sikrer fordøyelsen av absorbert materiale. Makrofager er aktive sekretoriske celler som frigjør enzymer, inhibitorer og komplementkomponenter i miljøet. Det viktigste sekretoriske produktet av makrofager er lysozym. Aktiverte makrofager utskiller nøytral proteinase (elastase, kollagenase), plasminogenaktivatorer, komplement faktorer, som for eksempel C2, C3, C4, C5, og interferon.

Celler av systemet med mononukleære fagocytter har en rekke funksjoner basert på deres evne til endocytose, dvs. absorpsjon og fordøyelse av fremmede partikler og kolloidale væsker. Takket være denne egenskapen utfører de en beskyttende funksjon. Ved makrofag kjemotakse migrere til steder av infeksjon og inflammasjon, hvori mikroorganismene er utført fagocytose, drepe dem og fordøye. Under forhold med kronisk betennelse kan oppstå spesielle former fagocytter - epiteloide celler (f.eks i smittsomme granuloma) og kjempe multinukleære celler celletype Pirogovs - Langhans typeceller og fremmedlegemer. som dannes ved sammensmeltning av individuelle fagocytter i en polykaryon - en multi-kjernecelle. I granulomer produserer makrofager glykoprotein fibronektin, som tiltrekker fibroblasci og bidrar til utviklingen av sklerose.

Celler Det mononukleære fagocytsystemet er involvert i immunforsvar.

Dermed er en forutsetning for utviklingen av en rettet immunrespons det primære samspillet mellom makrofagen og antigenet. Samtidig absorberes antigenet og behandles av makrofagen i den immunogene form. Immunstimulering av lymfocytter skjer ved direkte kontakt med makrofagen som bærer det transformerte antigenet. Immunresponsen utføres vanligvis som en kompleks multi-trinns interaksjon av G- og B-lymfocytter med makrofager.

Makrofager har antitumoraktivitet og utviser cytotoksiske egenskaper mot tumorceller. Denne aktiviteten er spesielt uttalt i den såkalte immunmakrofager som bærer lysering av tumor-målceller i kontakt med den sensitiverte T-lymfocytter som bærer cytophilous antistoff (lymfokiner).

Celler av det mononukleære fagocyt-systemet er involvert i reguleringen av myeloid og lymfoid hematopoiesis. Således, holmer av hematopoiesis i benmarg, milt, lever, plommesekken og embryo dannet rundt spesielle celler - makrofag sentrale organiser erytropoiese erythroblastic holme. Kupffer-celler i leveren er involvert i regulering av blod ved å produsere erytropoietin. Monocytter og makrofager produserer faktorer som stimulerer produksjonen av monocytter, nøytrofiler og eosinofiler. I thymus (thymus) og thymusavhengige områder av lymfoide organer finnes det såkalte interdigitiruyuschie celle - spesifikke stromale elementer er også relatert til cistems mononukleære fagocytter som er ansvarlige for migrering og differensiering av lymfocytter.

Utvekslingsfunksjonen til makrofager er deres deltakelse i metabolismen av jern.

I milten og benmargsmakrofager erythrophagocytosis utført, mens i de forekommer akkumulering av jern i form av ferritin og hemosiderin, som kan Pitom reutilizirovatsya erytroblaster.

15. Leukocyto og dens typer. leukopeni:

Leukocytformel er prosentandelen av visse typer leukocytter i perifert blod. Leukocyttformelen er modifisert på en bestemt måte, typisk for hver spesifikk sykdom. Leukocytter med ulike sykdommer, ofte med infeksjoner, endres kvantitativt.

Økning i antall leukocytter - leukocytose, redusere leukopeni.

Leukocytose kan være fysiologisk og patologisk, den første forekommer hos friske mennesker, den andre - med noen smertefulle forhold. Leukocytose er en forandring i blodets blodsammensetning, karakterisert ved en økning i antall leukocytter. Graden av leukocytter i blodet er 3,5-8,8 × 109 / l, men denne indikatoren kan variere opp eller ned, avhengig av laboratoriet og metodene som brukes.

Leukocytose kan være fysiologisk og patologisk, den første forekommer hos friske mennesker, den andre - med noen smertefulle forhold. For å bære nærings fysiologisk leukocytose (postprandial), myogene (etter fysisk anstrengelse), leukocytose gravid et al. Patologisk leukocytose reaksjon dannende organer på grunn av irritasjonen som forårsakes av smittsomme, giftig, pyoinflammatory, radiale og andre midler. Det er også observert i vevsnekrose (hjerteinfarkt, tumor dekomponering) etter alvorlig blødning, skader, traumatisk hjerneskade og andre. Vanligvis forsvinner leukocytose med sin årsak. Transient leukocytose, karakterisert ved utseendet i blodet av umodne leukocytter, kalles en leukemoidreaksjon.

Leukopeni - redusere antall leukocytter i blodet for visse infeksjons eller andre sykdommer, og som et resultat av stråleskade, medikamenter eller refleks effekt på benmargen.

Strålingsskader, kontakt med en rekke kjemikalier (benzen, arsen, DDT, etc.) fører til leukopeni; tar medisiner (cytostatika, enkelte typer antibiotika, sulfonamider, etc.). Leukopeni oppstår når virale og hardflytende bakterielle infeksjoner, sykdommer i blodsystemet.

Når leukopeni er nødvendig for å nøyaktig bestemme årsaken til sykdommen. Sammen med virale infeksjoner og sykdommer i organer krovetvoryaschih forårsake leukopeni kan være en bivirkning av allopatiske legemidler som en rekke medikamenter ha toksiske virkninger på benmarg og gjennom allergiske mekanismer kan forårsake leukopeni og agranulocytose.

Behandlingen består av forskrivning av legemidler som stimulerer utviklingen av nye leukocytter eller stimulerer frigivelsen av modne hvite blodlegemer.

16. Regulering av leukopoesis:

Regulering av leukopoiesis. Produksjonen av leukocytter stimuleres av leukopoetiner, som fremkommer etter rask fjerning av et stort antall leukocytter fra blodet. Den kjemiske naturen og stedet for dannelse i kroppen av leukopoetiner er ikke studert ennå. Nucleinsyrer, vevsforringelsesprodukter som oppstår under skade og betennelse, og noen hormoner har en stimulerende effekt på leukopoiesis. Således, under virkningen av hypofysehormoner - hormon og adrenokortikotropisk hormon vekst - økt antall av neutrofiler og redusert antall eosinofile i blod.

Nervesystemet spiller en viktig rolle i stimuleringen av leukopoiesis. Irritasjon av sympatiske nerver forårsaker en økning i nøytrofile leukocytter i blodet. Langvarig stimulering av vagusnerven fører til en omfordeling av blodleukocytter: innholdet øker i blodkar og den mesenteriske blod avtar perifer vaskulær sykdom; irritasjon og emosjonell agitasjon øker antall leukocytter i blodet. Etter å ha spist, øker innholdet av leukocytter i blodet som sirkulerer i karene. Under disse forhold, så vel som under muskulært arbeid og smertefulle stimuli, kommer leukocytter i milt og bindevev i blodet.