Prinsipp. Telling av leukocytter under mikroskopi i et visst antall kvadrater i tellekammeret og beregning av tall i 1 liter blod, med tanke på fortynning av blod og volumet av tellekammeret.
Reagens: 3-5% oppløsning av eddiksyre, tonet for farging kjerner av leukocytter med noen få dråper metylenblå løsning. Løsningen har en blå farge, kan lagres i lang tid.
Forutsetningen. I et tørt reagensrør løp 0,4 ml eddiksyreoppløsning. 0,02 ml blod samles opp fra en finger (du kan bruke antikoagulantstabilisert venøst blod). Tørke pipettens spiss, blås blodet fra det til bunnen av røret, bland, re-dial og blås blandingen av blod og reagens (pipettering). Merk røret og la det være til telling. Oppbevar en blanding av blod med en løsning av eddiksyre anbefales ikke mer enn 2-4 timer.
Blodet fortynnet i et reagensrør med eddiksyre, bland godt og fyll det med et teltkammer. Det fylte kammeret blir liggende i en horisontal stilling i 1 min for å slå seg ned i de hvite blodceller. Uten å endre kameraets horisontale posisjon, plasserer den den på mikroskopets bord og ved lav forstørrelse (okular 10 ×, linse 8 ×) teller de hvite blodlegemer i 100 store firkanter, noe som tilsvarer 1600 små.
For større nøyaktighet regnes leukocytter over gitteret i store firkanter, ikke delt inn i små firkanter og striper, fra det øverste venstre hjørnet av rutenettet. For bedre kontrast, mørk synsfeltet, slipp kondensatoren og lukk blenderåpningen. Cellene som ligger inne i torget og ligger på noen to linjer teller for ikke å telle den samme cellen to ganger.
Beregningen av antall leukocytter utføres i henhold til formelen:
hvor X er antall leukocytter i 1 μl blod; og - antall leukocytter i 100 store firkanter; 20 - blodfortynning; 100 er antall store firkanter; 250 er konverteringsfaktoren per 1 μl, siden volumet på ett stort torg er 1/250 μl (siden av torget er 1/5 mm, høyden er 1/10 mm).
I praksis, for å beregne antall leukocytter i 1 μl blod, blir tallet i 100 store firkanter multiplisert med 50, og i 1 liter - blir den resulterende verdien multiplisert med 106.
Merk. Når du teller leukocytter, er en feil uunngåelig i 6-8% av tilfellene.
- Med et stort antall normocytter i perifert blod teller de i antall leukocytter (både leukocytter og normocytter - kjernefysiske celler). For å riktig etablere antall leukocytter bør fra det totale antall nukleerte blodceller trekke antallet normocytter.
- De resterende feilene ligner de som oppstår ved beregning av antall røde blodlegemer i tellekammeret.
Leukocyttall
Tellermetoden i kameraet. Taking og fortynning av blod produsert av rørmetoden. 0,4 ml fortynningsvæske og 0,02 ml kapillærblod innføres i røret (fortrinnsvis Vidalevskaya). Den resulterende fortynning anses praktisk talt for å være 1:20. En 3-5% løsning av eddiksyre tonet med metylenblå brukes vanligvis som fortynningsmiddel (eddiksyre lyses erythrocytter, metylenblå flekker kjernene til leukocytter). Før fylling av kammeret Goryaeva rør med fortynnet blod rystes grundig. Kammeret er fylt på samme måte som for rødt blodcelletelling.
Leukocytter er mye mindre enn erytrocytter (1-2 pr. Stor firkant), derfor, for nøyaktighet, blir tallene gjort i 100 store firkanter (ungraded). Beregning: 100 store firkanter (1600 små) regnes som en leukocyt.
Husk at volumet av et lite torg er 1/4000 mm3, og blodet fortynnes 20 ganger, antall leukocytter i 1 μl blod beregnes: 4000 20 og delt med 1600 = a x 1/2. For å oppnå det virkelige innholdet av leukocytter i 1 μl blod, er det tilstrekkelig å dele i halvparten av tallet som er oppnådd i beregningen, og legge til 2 nuller. Den gjennomsnittlige metoden feil er ± 7%.
Mer nøyaktig (2-3% feil) og perfekt er tellingen av leukocytter ved hjelp av elektroniske enheter. Telling av leukocytter i partikkel tellere utføres i henhold til samme prinsipp som erytrocytter. Forblod er fortynnet og blandet med noen reagenslysering av røde blodlegemer. Den autoanalysator "Technion" som sådan anvendes eddiksyre, i apparaturen "Coulter" og "Tselloskop" - saponin eller sapoglobin som legger fortynnet (1: 500, 1: 700) i isotonisk natriumklorid-løsning (6 dråper pr 20 ml fortynning).
Blodleukocyttelling utføres i farget perifer blodutstryk.
Det er bedre å telle på det tynneste punktet nær smørets ende, minst 200 celler (unntatt uttalt leukopeni), og deretter utlede prosentandelen av visse typer hvite blodlegemer. Telling er anbefalt i den samme rekkefølgen: halvparten av celletallet i den øvre halvdel - ved bunnen av slaget, uten å gå til kanten og midten av sikksakk (3-4 syn langs smøre, 3-4 felt vinkelrett inn mot midten av slaget, så 3-4 felt til siden parallelt med kanten, igjen vinkelrett oppover og så videre til den ene siden).
Utarbeidelse av smører. Nøye vasket og avfettet glass (kanten) berører en dråpe blod på injeksjonsstedet. Smøre gjør slipeskjerm, legg det i en vinkel på 45 ° til lysbildet foran dråpen. Etter å ha tatt glasset til denne dråpen, venter de til blodet sprer seg langs kanten, og med en rask, enkel bevegelse utfører de slipeglasset fremover, ikke tar det bort fra motivet før det tørker hele dråpen.
Et skikkelig smurt har en gulaktig farge (tynn), når ikke glassets kanter og slutter i et spor (bart).
Fargestørrelser fremstilt etter foreløpig fiksering. Den beste fikseringen oppnås i absolutt metylenalkohol (3-5 minutter) eller i en blanding av Nikiforov med like deler av absolutt etanol og eter (30 minutter).
De viktigste hematologiske malingene inkluderer metylenblå og dets derivat - azurblå I (metylen azurblå) og azurblå II (en blanding av like deler azurblå I og metylenblå), til surt - vannoppløselig gul eosin.
● Maleri av Romanovsky-Giemsa. Romanovsky-Giemsa-maling (fabrikk-laget) har følgende sammensetning: Azur II - 3 g, vannløselig gul eosin - 0,8 g, metylalkohol - 250 ml og glyserin - 250 ml. Arbeidsmalingløsningen fremstilles ved en hastighet på 1,5-2 dråper ferdig maling per 1 ml destillert vann. Malingen helles på et smør med et muligens høyere lag; fargetid - 30-35 minutter Etter denne perioden vaskes vattpinnen med vann og tørkes i luft. I denne metoden er det mulig å differensiere kjernen godt, men cytoplasmens neutrofile granularitet er mye verre, så det er mye brukt til å fargelegge et perifer blodsprøyt.
● Kombinert May-Grunwald-Romanovsky-Giemsa-fargestoff ifølge Pappenheim. Et ferdig fargestoff, et mai-Grunwald-fiksativ, som er en løsning av eosinmetylenblå i metylenalkohol, pipetteres på et fast smear i 3 minutter. Etter 3 minutter tilsettes en lik mengde destillert vann til malingen som dekker oppløsningen, og fargen fortsetter i ytterligere 1 minutt. Etter det blir maling vasket av og smeten tørkes i luften. Deretter blir det tørkede smearet malt med en nytilberedt vandig løsning av Romanovsky-maling i 8-15 minutter. Denne metoden regnes som den beste, spesielt for smører av marrow punctates.
En økning i antall leukocytter i det perifere blod over det normale nivå kalles leukocytose, en reduksjon kalles leukopeni. Leukocytose (leukopeni) kjennetegnes sjelden av en proporsjonal økning (reduksjon) i antall leukocytter av alle slag, for eksempel leukocytose med fortykning av blodet. I de fleste tilfeller er det en økning i antall (reduksjon) av en hvilken som helst celletype. Økningen eller reduksjonen i antall individuelle typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolutt, avhengig av totalt leukocyttall - normalt, forhøyet eller redusert. Endringen i antall, forholdet mellom individuelle former og morfologi av leukocytter avhenger av patogenens type og virulens, naturen, kurset og omfanget av den patologiske prosessen, den individuelle reaksjonen av organismen.
Metode for å telle leukocytter i Goryaev-kammeret
Hvite blodceller - hvite blodlegemer - spiller en viktig rolle i den antimikrobielle beskyttelsen av kroppen. Granulocytter fagocytiserer mikrober og ødelegger dem ved hjelp av enzymer som er innesluttet i granulat; lymfocytter produserer antistoffer og gir immunrespons til kroppen.
Metoden for å bestemme testrørmetoden: Häll i et reagensrør 0,4 ml av en oppløsning av Türk (Türks væske inneholder eddiksyre for å ødelegge røde blodlegemer og metylenblått for farging av kjerner av leukocytter). Bruk en kapillærpipett til å trekke 0,02 ml blod fra en frisk dråpe, forsiktig blåse den inn i et reagensrør med et reagens og skyll pipetten. Bland godt. Samtidig er blodfortynning 20 ganger. En dråpe fortynnet blod samles på enden av en rund glassstang og påføres på kanten av et polert glasskammer.
Telling utføres i 100 store ubrukte firkanter, satt sammen av fire. Brukt en liten økning.
Utledningen av telleformelen nummer 1.
1. 100 firkanter inneholder 1600 små firkanter (16x 100)
2. Blodvolum over liten firkant 1/4000 mm3
3. Fortynning av blod 20 ganger
Antall leukocytter i 1 μl blod = ved -4000-20. = Ax 50
For eksempel: 130 leukocytter ble telt i 100 store firkanter av Goryaev-nettet. I 1 μl blod vil antall leukocytter være 130 x 50 = 6500 eller 6,5-10 3.
For å bestemme innholdet av leukocytter i 1 liter blod, må antall leukocytter, uttrykt i tusen, multipliseres med 10 9.
I vårt eksempel er antallet leukocytter i 1 liter blod 6,5-10 9.
194.48.155.245 © studopedia.ru er ikke forfatter av materialene som er lagt ut. Men gir mulighet for fri bruk. Er det et brudd på opphavsretten? Skriv til oss | Kontakt oss.
Deaktiver adBlock!
og oppdater siden (F5)
veldig nødvendig
Leukocyttall i blod
Leukocytose kan være absolutt (sann) og relativ (omfordeling).
Absolutt leukocytose er observert ved akutte inflammatoriske prosesser, vevnekrose, akutte bakterielle infeksjoner (med unntak av tyfus, brucellose, tularemi, etc.), allergiske tilstander, ondartede svulster (med vevsødeleggelse), lukkede hodeskader og blødninger i hjernen, diabetes. uremisk koma, sjokk, akutt blodtap, som den primære reaksjonen - med strålingssykdom. En signifikant økning i antall leukocytter forekommer med leukemi.
Relativ (omfordeling) er en konsekvens av mottak av leukocytter i blodstrømmen fra organene som tjener til depotet. Det oppstår etter å ha spist (mat leukocytose), varme og kalde bad, sterke følelser (vegetovaskulær leukocytose), intenst muskulært arbeid (myogen leukocytose), etc.
Leukopeni. Leukopeni er å anse som en indikator på benmargsfunksjon undertrykkelse kapasitet på grunn av eksponering til toksiske substanser (arsen, benzen og lignende), enkelte legemidler (sulfonamider, kloramfenikol, fenylbutazon, immuran, cyklofosfamid, etc.), viruser (influensa, viral hepatitt, meslinger, etc.), mikrober (tyfus, brucellose, etc.), ioniserende stråling, røntgenstråler og hypersplenisme (økt miltfunksjon).
Leukocytose og leukopeni kjennetegnes sjelden av en proporsjonal økning (reduksjon) i totalt antall leukocytter av alle typer (for eksempel leukocytose med fortykkelse av blodet); I de fleste tilfeller er det en økning (reduksjon) av enhver celletype, men begrepene "neutrophilia" "Nøytropeni" "lymfocytose", "lymfopeni", "eosinofili", "eosinopenia", "monocytose", "monotsitopeniya", "Basophilia."
I den kliniske evalueringen av endringer i antall leukocytter er stor betydning knyttet til prosentandelforholdet mellom individuelle former for leukocytter, det vil si leukocytformel.
Leukocyt blodtal av en sunn person:
Relativ mengde Absolutt beløp
Basofiler............................0-1% 0-0.0650 x 10 9 / l
Eosinofiler.........................0,5-5% 0,02-0,30 x 10 9 / l
Neutrofiler: - myelocytter............ 0% fraværende
- stikket... 1-6% 0,040-0,300 x 10 9 / l
- segmentert....47-72% 2,0-5,5 x 10 9 / l
Lymfocytter..................................19-37% 1,2-3,0 x 10 9 / L
Monocytter.............................. 3-11% 0,09-0,6 x 10 9 / L
Leukocyttelling utføres i farget perifert blodutstryk. For riktig tolkning av resultatene av studien av leukocytformel, anbefales det å telle i absolutte mengder, men ikke i relative. De vanligste metodene for maleri utsmykninger av Romanovsky-Giemsa, Pappenheim. Under nedsenking teller minst 200 celler, og deretter blir prosentandelen av visse typer leukocytter avledet. Analyse av leukogram med hensyn til andre blodparametere og det kliniske bildet er en verdifull metode for undersøkelse, det hjelper ved diagnostisering og bestemmelse av prognosen av sykdommen.
Hovedårsakene til nøytrofili.
Akutte bakterielle infeksjoner - lokalisert og generalisert.
Betennelse eller nekrose av vevet.
Medisinske effekter (kortikosteroider).
Hovedårsakene til nøytropeni.
Infeksjoner - bakteriell (tyfus, brucellose, tularemi, paratyphoid feber) og virus (infeksiøs hepatitt, meslinger, influensa, rubella og andre).
Myelotoksiske effekter og undertrykkelse av granulocytopoiesis (ioniserende stråling, kjemiske midler - benzen, anilin, DDT, medisinske effekter - cytostatika og immunosuppressive midler, vitamin B12-folsyrebristanemi, akutt aleukemisk leukemi, aplastisk anemi).
Antistoff eksponering (immunforsvar) - Overfølsomhet overfor stoffer, autoimmune sykdommer (SLE, revmatoid artritt, kronisk lymfatisk leukemi), isoimmune manifestasjoner (hemolytisk sykdom hos nyfødte).
Omfordeling og deponering i organer - sjokkbetingelser, sykdommer med splenomegali og hypersplenisme.
Arvelige former (familiær godartet kronisk nøytropeni).
Hovedårsakene til eosinofili.
Parasittiske invasjoner (trichinose).
Kroniske hudlidelser - psoriasis, pemphigus, eksem.
Tumorer (eosinofile varianter av leukemi).
Andre sykdommer - fibroplastisk endokarditt Lefflera, skarlet feber.
I utvinningsfasen av infeksjoner og inflammatoriske sykdommer (gunstig prognostisk tegn).
Årsaker til eosinopeni (aneosinofili).
Økt adrenokortikosteroidaktivitet i kroppen.
Hovedårsakene til basofili:
Kronisk myeloid leukemi og erythremi.
Hovedårsakene til monocytose.
Subakutte og kroniske bakterielle infeksjoner.
Parasittiske infeksjoner - leishmaniasis, malaria.
Hemoblastose - monocytisk leukemi, lymfogranulomatose, lymfomer.
Andre tilstander er SLE, sarkoidose, reumatoid artritt, infeksiøs monocytose; i perioden med utvinning fra infeksjoner, når man forlater agranulocytose, etter splenektomi.
Nedgangen i antall monocytter er viktig hovedsakelig ved vurdering av lymfocyt-monocytisk forhold i lungetuberkulose.
Hovedårsakene til lymfocytose.
Infeksjoner - akutt viral (infeksiøs mononukleose, meslinger, rubella, kyllingpoks), kronisk bakteriell (tuberkulose, syfilis, brucellose), protozoal (toxoplasmose).
Hemoblastose (lymfocytisk leukemi, lymfom).
Andre sykdommer - hypertyreose, Addison sykdom, vitamin B12-folisk mangelanemi, hypo og aplastisk anemi.
Lymfocytopeni er observert i SLE, Hodgkins sykdom, utbredt tuberkulose av lymfeknuter, i den terminale fasen av nyresvikt, akutt strålingssykdom, immunodefekt tilstand, tar glukokortikoider.
Økningen eller reduksjonen i antall bestemte typer leukocytter i blodet kan være relativt eller absolutt. Hvis bare prosentandelen av en bestemt type hvite blodlegemer endres, finner sted relativ nøytrofili, relativ eosinopeni, etc.. Økningen eller reduksjonen i absolutt innhold av en hvilken som helst type leukocytter, det vil si antallet av disse cellene per volum av blod, kalles absolutt nøytrofili, absolutt eosinopeni, etc.
Bytte formelen til venstre (øke antall unge former for nøytrofiler) er et tegn på betennelse eller en nekrotisk prosess i kroppen.
Skiftet av leukocyttformelen til høyre er karakteristisk for strålingssykdom og vitamin B12-folsyre mangel anemi.
Fraværet eller signifikant reduksjon i antallet av alle typer granulære leukocytter - granulocytter (nøytrofiler, eosinofiler, basofiler) er betegnet med begrepet agranulocytose. Avhengig av forekomstsmekanismen, myelotoksiske (effekter av ioniserende stråling, cytostatisk inntak) og immun (hapten og autoimmun agranulocytose) skiller seg ut.
Leukocytter (leukocytter)
Leukocytter. Kvantitativ bestemmelse av leukocytter. Telle leukocytter ved hjelp av kameraet Goryaeva. Kvantitativt innhold av leukocytter. Leukocytose.
Hvite blodlegemer
Antall leukocytter i blod avhenger av hastigheten av deres dannelse og deres mobilisering fra benmargen, så vel som utvinning og migrering inn i vev (skade foci), å fange opp lys og milt. Disse prosessene i sin tur påvirkes av en rekke fysiologiske faktorer, og derfor antallet av leukocytter i blod fra en frisk person er utsatt for svingninger: det stiger mot slutten av dagen, under fysisk anstrengelse, emosjonelt stress, mottak proteinrik mat, en skarp endring i omgivelsestemperaturen.
Kvantitativ bestemmelse av leukocytter
Leukocytter teller ved hjelp av Goryaev-kameraet og bruker automatiske tellere.
Telle leukocytter ved hjelp av kameraet Goryaeva
Med in vitro-metoden for å ta blod for å telle leukocytter:
- 0,4 ml av en oppløsning av 3-5% eddiksyre tonet med metylenblått helles i røret. Bruk en kapillærpipette til å tegne 20 μl blod fra en frisk dråpe (fortynning 20 ganger), skru den forsiktig inn i et reagensrør med et reagens og skyll pipetten. Bland godt
- et rent og tørt dekselglass gnides på kammeret slik at regnbuens ringer danner ved kontaktpunktet;
- Blod fortynnet i et reagensrør, bland godt. Enden av en rund glassstang tar en dråpe blod og bringer den til kanten av kammerets polerte glass;
- Etter fylling av kammeret blir det igjen i 1 min i ro for sedimentering av leukocytter;
- Leukocytter vurderes ved lav forstørrelse (objektiv × 8 eller × 9, okular × 10 eller × 15) med mørkret synsfelt (med nedsenket kondensator eller innsnevret membran);
- For tilfredsstillende resultater teller leukocytter i 100 store firkanter.
Å vite volumet av et stort torg og graden av fortynning av blod, finner antall leukocytter i 1 μl og 1 1 blod. Siden av det store torget er 1/5 mm, området er 1/25 mm2, volumet av plass over dette torget er 1/250 mm3.
Formel for å telle hvite blodlegemer:
hvor B er antall leukocytter i 100 store firkanter;
P - grad av fortynning (20).
Leukocyttall
Norm: 4,0-9,0 × 10 9 / L
Økningen i antall leukocytter over 9,0 × 10 9 / l kalles
leukocytose, en nedgang i antallet under 4,0 × 10 9 / l - leukopeni. Imidlertid kan selv 3,5 × 10 9 i 1 liter leukocytter for en rekke individer være normen. Ifølge litteraturen har slike personer økt immunmotstand og de er mindre sannsynlige å bli syke, noe som synes å skyldes behovet for et immunrespons å ha en reserve av leukocytter i vev, hvor det er 50-60 ganger mer enn i blodet. Åpenbart, hos friske personer med lave hvite blodlegemer i perifert blod, øker deres reserver i vev tilsvarende. Dette fenomenet forklares av arvelig og familiær karakter eller ved en økning i påvirkning av det parasympatiske nervesystemet.
Leukopeni kan være funksjonell og organisk.
Funksjonell leukopeni er assosiert med dysregulering av bloddannelse og observeres:
- med enkelte bakterielle og virusinfeksjoner (tyfusfeber, influensa, kopper, røde hunder, Botkin's sykdom, meslinger);
- under virkningen av stoffer (sulfonamider, analgetika, antikonvulsiva midler, antithyroid, cytostatiske og andre legemidler);
- under muskelarbeid, innføring av fremmed protein, nerve og temperatureffekter, sult, hypotoniske tilstander;
- falsk leukocytopeni kan være assosiert med leukocytt aggregering ved langvarig lagring av blod ved romtemperatur (mer enn 4 timer).
Organisk leukopeni som følge av benmarg aplasi og erstatning med fettvev, oppstår når:
- aplastisk anemi
- agranulocytose;
- leukopenisk leukemi;
- noen former for Hodgkin's sykdom;
- ioniserende stråling;
- hypersplenisme (primær og sekundær);
- kollagen sykdommer.
leukocytose
Leukocytose er reaksjonen av det hematopoietiske systemet til effektene
eksogene og endogene faktorer. Det er fysiologisk og patologisk leukocytose.
Fysiologisk leukocytose er:
- fordøyelsessystemet - etter å ha spist, spesielt høyt i protein; antall leukocytter overstiger ikke 10,0-12,0 × 10 9 / l og etter 3-4 timer vender det tilbake til normalt;
- i henhold emosjonelt stress (avgivende epinefrin), tung fysisk belastning, kjøling, dreven soling (solbrenthet), innføring av en rekke hormoner (katekolaminer, glukokortikoider og al.), i den andre halvdel av graviditet og i løpet av menstruasjonen og som skyldes ujevn fordeling av leukocytter i blod den vanlige.
Patologisk leukocytose er delt inn i absolutt og relativt.
Absolutt leukocytose - en økning i antall leukocytter i blodet opptil flere hundre tusen (100,0-600,0 × 10 9 / l og mer).
- Mest sett i leukemi: i kronisk leukemi - i 98-100% av tilfellene, ved akutt leukemi - i 50-60%. Endring av forholdet mellom leukocyttceller i beinmarg og blodpunkta tjener som grunnlag for diagnosen leukemi.
Relativ leukocytose er observert:
- akutt betennelses- og smittsomme prosesser, med unntak av tyfusfeber, influensa, kopper, rubella, Botkin's sykdom, meslinger. Den største leukocytose (opptil 70,0-80,0 × 10 9 / l) observeres i sepsis;
- under påvirkning av giftige stoffer (insektgift, endotoksiner), ioniserende stråling (umiddelbart etter bestråling);
- som et resultat av virkningen av kortikosteroider, adrenalin, histamin, acetylkolin og digitalispreparater;
- med vevsoppløsning (nekrose), myokardinfarkt, trombose av perifere arterier med utvikling av gangrene, brannsår, ekssudativ pleurisy, perikarditt, uremi, hepatisk koma;
- betydelig blodtap i skader, indre, gynekologisk og annen blødning.
Økningen i antall leukocytter i smittsomme sykdommer i de fleste tilfeller er ledsaget av et skifte av leukocytformelen til venstre
Leukocyttall og leukocyttall.
For å telle leukocytter blir blod fortynnet i blandere eller i reagensrør. Til dette formål, bruk 3-5% oppløsning av eddiksyre (for destruksjon av røde blodlegemer), tonet med et hvilket som helst anilinfarvestoff (for farging av kjerner av leukocytter). Tellerruten fylles på samme måte som for røde blodlegemer. Leukocytter regnes i 100 store firkanter. I Goryaev-nettet er det praktisk å telle dem i ubrukte firkanter (det er 100 på dem). Gitt fortynningen av blod og volumet av væske over rutene, beregne en konstant multiplikator. Ved avl 20 ganger er det 50.
Når de arbeider med reagensrør, fyller de 0,38 ml væske i dem og slipper 0,02 ml blod inn i det. For å beregne den automatiske tellingen i reagensrør, røde blodceller hemolyze med saponin. Normalt antall hvite blodlegemer er 4,3 • 10 9 -11,3 • 10 9 / l eller 4300-11 300 i 1 μl blod.
Leukocyttelling telt i farget utstrykning.
Et godt smør oppfyller følgende krav: det er tynt, og de formede elementene ligger i det i ett lag; i dette tilfellet er smeten gul og gjennomskinnelig. Et godt smøre er jevnt, og cellene blir ikke skadet av smøring. For at blodet skal ligge jevnt på glasset, blir det avfettet ved å brenne en gassbrenner over flammen eller holdes i en blanding av alkohol og eter. Ved glassets ende berører de den nyutgitte lille bloddråpen og sprer den omgående på glasset. Før flekker blir smøring festet ved nedsenkning i metanol i 3 minutter, i etanol eller blandingen med eter i 30 minutter. Det finnes en rekke andre fikseringsverktøy. Vokspinnen tørket etter fiksering er fylt med fargestoff.
For å skille blodceller (definisjoner av leukocytformel), ty til differensiell farging. Den mest brukte fargen av Romanovsky-Giemsa. Denne fargen er en blanding av svakt syre (eosin) og svakt alkaliske (azurblå II) maling. Celler og deres deler, avhengig av mediumets reaksjon, oppfatter en eller annen bestanddel av fargestoffet i dem: sure (basofile) stoffer er farget azurblått, alkalisk (oksyfilisk) farget eosinrødt; Nøytral oppfatter begge farger og blir lilla.
Leukocyt-formel refererer til prosentandelen av individuelle former for blodleukocytter.
NB! For en tilstrekkelig nøyaktig beregning er det nødvendig å se minst 200 hvite blodlegemer.
Teller er gjort med et nedsenkningssystem. På grunn av det faktum at cellene er ujevnt plassert i smøret (større går til kantene), er det viktig å følge slike bevegelsesordninger på smøret, hvor kantene og mellomområdet vil bli sett på like. En av de to bevegelsesmetodene brukes: en av dem beveger streken fra toppkanten til bunnen, beveger den 2 til 3 synsfelt langs kanten, går deretter i motsatt retning til toppkanten, etc. I den andre metoden beveger de seg fra kanten med 5 -6 felt til midten av et slag, deretter samme belte sidelengs, deretter tilbake til kanten, flytt flere sider sideveis og gjenta bevegelsen igjen til 50 celler teller. Se 4 av disse områdene ved de fire hjørner av smøret. Talt 200 celler, tallet er delt i halvdel og bestemmer tallet for hver type hvite blodlegemer.
Leukocytter er elementer i blodet, som raskt reagerer på ulike eksterne påvirkninger og endringer i kroppen. Bestemmelsen av det totale antall leukocytter kan ha stor diagnostisk verdi, siden det avslører tilstanden til bloddannende organer eller deres respons på skadelige effekter. Økningen i antall leukocytter - leukocytose - er et resultat av aktivering av leukopoiesis, en reduksjon av antallet deres - leukopeni - kan avhenge av inhibering av bloddannende organer, deres utarmning og økt nedbrytning av leukocytter under virkningen av anti-leukocytantistoffer 1. Neutrofiler. Den mest variable gruppen av leukocytter er nøytrofiler, hvorav antallet øker med mange infeksjoner, forgiftninger og nedbrytning av vev.
Karakteristisk for aktiv neutroposese er ikke bare en økning i det totale antallet neutrofiler i blodet, men også utseendet på umodne former i det: antallet av stabile bærer øker, unge neutrofiler oppstår, noen ganger selv myelocytter. Denne "foryngelse" av den nøytrofile sammensetning kalles leukocytskiftet til venstre. Beskyttelsesrollen til nøytrofiler bestemmes av deres fagocytiske funksjon, bakteriedrepende virkning og frigjøring av proteolytiske enzymer som fremmer resorpsjonen av nekrotisk vev og helbredelse av sår.
Oftest forekommer et regenerativt skifte i nærvær av enhver inflammatorisk prosess eller et fokus på nekrose. En veldig skarp venstre skift til promyelocytter og selv myeloblaster med signifikant leukocytose kalles leukemoidreaksjonen. Nedgangen i antall nøytrofiler - absolutt nøytropeni - oppstår når beinmargen hemmer eksponering for toksiner av enkelte mikroorganismer (forårsaker av tyfus, brucellose, etc.) og virus, ioniserende stråling, en rekke stoffer.
2. Lymfocytter. Lymfocytose observeres i gjenvinningsperioden fra akutte smittsomme sykdommer, med infeksiøs mononukleose, smittsom lymfocytose, lymfocytisk leukemi, rubella, brucellose, tyrotoksikose.
Absolutt lymfopeni forekommer i strålingssykdom, systemiske lesjoner i lymfesystemet: lymfom, lymfosarcoma.
3. Eosinofiler. De finnes i blodet i relativt små mengder (hovedsakelig funnet i vevet), men antallet øker, noen ganger signifikant, i allergiske prosesser (serumsykdom, bronkial astma), helminthic invasjoner og pruritiske dermatoser.
En reduksjon i antall eosinofiler - eosinopeni - opp til fullstendig forsvinning, observeres ved sepsis, alvorlige former for tuberkulose, tyfoid og alvorlig rus.
4. Basofiler. Er bærere av viktige mediatorer av vævsmetabolisme (blod "ekvivalenter" av fettvevceller). Når en organisme er sensibilisert, øker antallet deres, og når allergenet gjeninnføres, avtar det kraftig som følge av deres sammenbrudd.
5. Monocytter. Økningen i antall monocytter - monocytose - er en indikator på utviklingen av immunforsvar. Monocytter er anerkjent som analoger av vevmakrofager. Monocyt finnes i en rekke kroniske sykdommer (kronosepsis, tuberkulose, syfilis). Monocytopeni observeres noen ganger i alvorlige septiske, hypertoksiske former for tyfusfeber.
Agranulocytes. Et karakteristisk trekk ved agranulocytter er den ikke-segmenterte kjernen og den basofile (blå) cytoplasma.
Lymfocytt er den minste leukocytten i størrelse. Kjernen er rund, oval eller bønneformet; opptar mesteparten av cellen, intenst farget. Cytoplasma av de fleste lymfocytter med en smal rand omgir kjernen, er farget i en lyseblå farge og klargjøres til kjernen.
Monocyt er den største av blodcellene. Stor kjerne av uregelmessig form og relativt lys farge. Cytoplasma er en grå-blå, røykfarge, ikke klarlagt til kjernen
I tillegg til disse cellene er det sjeldent i normalt blod, og plasmaceller kan ofte forekomme i sykdommer. De er preget av en eksentrisk plassert tett kjerne, ofte med en hjullignende struktur. Antallet av disse cellene øker med visse smittsomme sykdommer, sår sepsis og multiple myelomer.
Ved beregning av leukocyttformelen blir oppmerksomhet ikke bare betalt for kvantitative skift i den, men også til kvalitative endringer i formelementene. Tidligere ble degenerative endringer i leukocytter notert. Ved alvorlig forgiftning blir nøytrofilgranulariteten rikelig, stor, intens farget og kalles giftig (eller toksogen). Noen ganger finnes blodsprut i blodutløp, malt som kjernevnen av leukocytter. Dette er de såkalte Botkin-Humprecht-skyggene - rester av nukleær kromatin, noe som indikerer økt leukocytbrittlenhet, noe som fører til deres sammenbrudd - leukocytolyse
99. Metoder for å bestemme blodgruppen, begrepet Rh-faktor.
1. Bestemmelse av blodgruppen ved standard sera:
Følgende utstyr er påkrevd:
o to sett med standard hemagglutineringssera I (0), II (A), III (B) grupper av to forskjellige serier og ett hetteglass med serum IV (AB)
o flaske med isotonisk løsning av natriumklorid med pipette
o ren vasket tørrplate
o glass lysbilder
o sterile spydnåler for punktering av kjøttet på fingeren
o sterile gaze baller,
Standard sera for bestemmelse av blodgruppe i henhold til ABO-systemet produseres med en bestemt fargemerking.: I (0) - fargeløs, II (A) - blå, III (B) - rød, IV (AB) - gul. Serum lagret ved 4-10 ° C. Serum skal være lys og gjennomsiktig. Tilstedeværelsen av flak, sediment, turbiditet er tegn på uberettiget serum. De første tegnene på agglutinering bør vises senest 30 sekunder.
Platen er delt inn i fire firkanter med en farget blyant og i retningen med urviseren er det kvadratene I (0), II (A), III (B). En stor dråpe serum i to serier I (0), II (A), W (B) -grupper blir satt inn i den tilsvarende platen av platen med en pipette. Fingerputen blir behandlet med alkohol og en nål er punktert på huden. Den første bloddråpen fjernes med en gasbind, de etterfølgende dråper i forskjellige deler av lysbildet påføres suksessivt til dråpene av serum og omrøres grundig. En dråpe blod skal være 5-10 ganger mindre enn en dråpe serum. Deretter blandes blodet med serum ved å riste platen grundig. Foreløpige resultater blir evaluert etter 3 minutter, hvoretter en dråpe isotonisk natriumkloridoppløsning blir tilsatt, blandes igjen ved å riste platen, og etter 5 minutter utføres en endelig vurdering av agglutineringsreaksjonen.
Med en positiv isohemagglutineringstest, avviker flakene og kjernene fra de adhererte røde blodcellene ikke ved tilsetning av en isotonisk løsning av natriumklorid og omrøring.
Når en negativ reaksjon dråper serum på en plate gjennomsiktig, jevnt rosa, inneholder ikke flak og korn.
Følgende 4 kombinasjoner av agglutineringsreaksjoner med standardsera av gruppene I (0), II (A), III (B) er mulige.
v Alle 3 sera i begge seriene agglutinerer ikke. Blodprøve -
Jeg grupperer.
v Isohemagglutineringsreaksjonen negativ med serum P (A) -grupper i begge serier og positive med serum I (0) og III (B) -grupper. Blodprøve -
II (A) gruppe.
v Isohemagglutineringsreaksjonen er negativ med serum fra III (B) -gruppen i både serier og positive med serum i I (0) og II (A) -gruppene. Blodprøve -
III (B) gruppe.
v Serum I (0), II (A), III (B) -gruppene gir en positiv reaksjon i begge serier. Blod tilhører IV (AB) gruppen. Men før du gir en slik konklusjon, er det nødvendig å utføre en isohemagglutineringsreaksjon med standard serum IV (AB) i gruppen ved å bruke samme fremgangsmåte. En negativ isohemagglutineringstest muliggjør endelig å tildele testblodet til IV (AB) -gruppen.
2. Konseptet med Rh-faktoren.
Et annet antigen (agglutinogen) ble funnet i erytrocytene, som ble kalt Rh-faktoren. Alle mennesker er delt inn i personer med Rh-positive (Rh +) og Rh-negative (Rh) blod. Det er blitt fastslått at 85% av mennesker i erytrocytene inneholder Rh-faktoren, dvs. deres blod er Rh-positivt og 15% inneholder ikke det, dvs. blodet av disse menneskene er Rh-negativt. Til Rh-faktoren (Rh-antigen) er det normalt ingen anti-Rh-agglutinin (ferdige antistoffer) i blodet. Slike antistoffer opptrer bare i blodserum som et resultat av immunisering av en person med Rh-negativt blod med Rh-positive røde blodlegemer. Slike immunisering skjer på grunn av gjentatte transfusjoner av Rh-positivt blod til en Rh-negativ mottaker eller under graviditet av en kvinne med Rh-negativt Rh-positivt blod. Immunisert på denne måten blir folk sensibilisert: når de blir transfisert med Rh-positivt blod, utvikles en alvorlig komplikasjon - et blodtransfusjonsjokk.
Telling av antall leukocytter og blodplater
Faktorer som påvirker korrektheten av studien av hvite blodlegemer
- lang lagring av blod ved romtemperatur
Norm av innholdet av leukocytter i blodet
Alder Antall leukocytter
- 1 dag 11,6 - 22,0
- 1 uke 8,1.- 14,3
- 1 måned 7,6 - 12,4
- Voksne 4,0 - 9,0
Metoder for å bestemme antall leukocytter i blodet.
- Teller antall leukocytter i tellekammeret
- Telle leukocytter i hematologiske analysatorer
Bestemme antall leukocytter i tellekammeret.
- Telling av leukocytter under et mikroskop utføres etter lysering av røde blodceller i 100 store firkanter av tellegitteret og omberegnet for 1 liter blod, basert på volumet av kvadrater og fortynning av blod. Tellingen av leukocytter bør gjøres innen 2-4 timer etter blodinnsamling.
- Hvis det er nukleerte røde blodlegemer i perifert blod, blir de ikke lysert og telt sammen med leukocytter. I dette tilfellet, for å bestemme det sanne antall leukocytter, blir antall celler i den røde raden subtrahert fra det totale antall tellte celler.
- For eksempel: Det totale antall leukocytter i beregningen i kammeret (eller analysatoren) -45x109 / l. Ved beregning av leukocytformelen ble det funnet at 50 erythroblaster (normoblaster) er tilstede per 100 leukocytter.
Vi beregner det sanne antall leukocytter i blodet:
150 celler - 45 x 109 / l
100 celler (leukocytter) - X
X = 100 * 45 * 10 / l / 150 = 30 * 10 / l
Således er det sanne antall leukocytter i blodet 30 x 109 / l.
De viktigste kildene til feil i beregningen av leukocytter i kammeret:
- Feil forhold mellom blod og eddiksyre volumer tatt i et reagensrør.
- Feil forberedt løsning av eddiksyre (i en konsentrasjon på mer enn 5%, kan noen leukocytter lyse, noe som vil føre til en undervurdering av resultatet).
- Langvarig eksponering av prøven ved temperaturer over 28 ° C, noe som kan akselerere lysen av leukocytter i prøven og føre til en underskatt av resultatet.
- Feil fylling av Goryaev-kammeret. Som med beregning av røde blodlegemer, må kameraet stå i 1 minutt for å slå seg opp i cellene.
- Goryaev-kameraet ble ikke vasket godt nok etter den forrige definisjonen. Leukocytter som er igjen i kammeret kan overvurdere resultatene av analysen.
Blodplate teller metoder
- i teltkammeret
Hver gruppe metoder har fordeler og ulemper.
- Telling av blodplater i kammeret er tilstrekkelig nøyaktig, krever ikke å beregne antall røde blodceller. På den annen side er denne metoden vanskeligere, siden blodplater i den innfødte formen er representert av små og dårlige kontrastelementer. Ulempen med metoden er blodplate telling i de kommende timene etter å ha tatt blod.
- Fastsettelse av antall blodplater i blodutløp er signifikant dårligere i nøyaktigheten av kammermetoden eller automatiske tellere. Feil ved å telle i blodutslipp kan skyldes dårlig smetekvalitet og tilhørende ujevn fordeling av blodplater, unøyaktig bestemmelse av antall røde blodlegemer. En signifikant ulempe ved fremgangsmåten er nødvendigheten av samtidig å telle blodplater og røde blodlegemer i blodet. Fordelen med det er evnen til å studere blodplater når som helst, uansett tidspunktet for blodsamlingen.
- Metoden for å bestemme blodplater ved hjelp av en hematologisk analysator lar deg nøyaktig bestemme antallet blodplater, deres gjennomsnittlige volum og volumfordeling.
Samlet metode for å telle antall blodleukocytter i tellekammeret;
Metoder for å telle antall leukocytter i blodet
Unified 2 metoder for å bestemme antall leukocytter i blodet:
- i teltkammeret;
- ved hjelp av hematologiske analysatorer.
Prinsipp Leukocytter teller under et mikroskop i et bestemt volum av tellekammeret med konstant fortynning av blod etter ødeleggelse av røde blodlegemer.
Reagens: 3-5% oppløsning av eddiksyre, tonet med en vandig løsning av metylenblått til flekkleocyte-kjerner og lette deres telle. Løsningen er blå i farge, stabil i lagring.
Spesielt utstyr: mikroskop, tellekammer Goryaeva.
Forutsetningen. Ved hjelp av en målepipett eller en automatisk dispenser, blir nøyaktig 0,4 ml eddiksyreoppløsning hellet i agglutineringsrøret og 0,02 ml (sali kapillær) blod blir tilsatt. Vask kapillæren flere ganger med en syreoppløsning og bland innholdet i røret. Dette resulterer i en fortynning av blod 20 ganger. La til å telle, men ikke mer enn 2-4 timer etter blodprøvetaking. Goryaev-kammeret er forberedt på arbeid ved å tørke et dekselglass slik at regnbuens ringer vises. Skyll igjen innholdet i røret grundig og fyll Goryaev-kammeret med denne blandingen ved hjelp av en Pasteur pipette eller en glassstang med smeltet ende. La det fylte tellekammeret stå i 1 minutt i en horisontal posisjon for leukocyt-sedimentering. Leukocytter telles i 100 store, ikke-graderte firkanter av tellekammeret under betingelsene: kondensatoren senkes, okularet 10x eller 15x, linse 8x. Tellingen starter fra det øvre venstre hjørnet av Goryaev-kameraet. Når de teller leukocytter, styres de av regelen: Alle celler i torget og på avgrensningslinjene regnes hvis de for det meste går inn på torget. Celler krysset av en skillelinje nøyaktig i halvparten, regnes kun på to sider av en firkant (for eksempel venstre og topp).
Beregning. Ved beregning av antall leukocytter i 1 μl blod, bruk formelen:
- Antall leukocytter i 1 ml blod;
a - antall leukocytter, beregnet i 100 store firkanter;
4000 - volum konverteringsfaktor til 1 μl, basert på volumet av det lille torget, som er μl;
1600 - antall telle små firkanter;
20 - blodfortynning.
For å konvertere antall leukocytter i SI-enheter (i 1 l blod), blir den resulterende tallet multiplisert med 10 6.
Praktisk sett for å bestemme innholdet av leukocytter i 1 liter blod, multipliseres antallet leukocytter, beregnet i 100 store firkanter av tellekammeret med 50, divisjonert med 1000 (det vil si overført til et komma med 3 tegn til venstre) og multiplisert med 10 9.
Metoder for å telle leukocytter i Goryaev-kammeret, normer for indikatorer og avvik
Goryaev-kammeret er en enhet for måling av antall celler og partikler i et bestemt volum væske (blod, urin), bestående av en spesiell tykk gjenstand og dekselglass.
Et glassglass har et forsenket område i midten, som påføres et rutenett på 225 store firkanter. Av disse rutene er 25 jevnt fordelt på 16 mindre firkanter. På grunn av dette nettvolumet blir beregningen utført mer nøyaktig enn i andre håndholdte tellerenheter.
Kamera service
Etter bruk av instrumentet desinfiseres lysbildet ved nedsenking i en 4% formalinløsning i en time eller i en 70% etanolløsning i en halv time. Deretter vaskes kammeret grundig med destillert vann. Overflødig væske fjernes med en myk klut. Det er verdt å ta hensyn til det faktum at kameraet ikke kan tørkes med en bomullspinne på grunn av at fibrene klamrer seg til det. Lagret glass på et tørt sted.
Under bruk av kameraet beregnes PE som ligger innenfor rutenettet og på de øverste og venstre linjene i omkretsen. I dette tilfellet er partiklene som berører høyre og nedre linjer av omkretsen under beregningen av denne cellen, ikke inkludert.
Bestemmelse av leukocytter i blodet
Metode for å telle leukocytter
Beregningen av antall leukocytter begynner med fortynning av blod i en 3-5% løsning av etansyre med metylblå 20 ganger. Arbeidsmateriale før bruk tørk tørr med gassbind.
Cover glass må tørkes før Newtons fargerike ringer utseende. Deretter er kammeret fylt med fortynnet blod, mens de første to dråpene slippes ut på filterpapir. Væsken kommer inn i kammeret på grunn av vannets kapillære egenskaper. Det er viktig å sikre at ingenting strømmer inn i sporene ved fylling. Hvis dette skjer, fjernes væsken forsiktig med filterpapir. Deretter forlater rutenettet alene i et minutt, og venter på FE for å stoppe bevegelsen.
Tellingen av hvite blodlegemer utføres innenfor hundre store firkanter ved lav forstørrelse, det vil si med et okular på 10x og et mål 8x, i henhold til Egorovs regel. Den resulterende figuren brukes i formelen.
X = (n × 250 × 20) / 100 eller X = n × 50
X - antall leukocytter.
n er tallet som er oppnådd ved å telle i kammeret.
Antall leukocytter bestemmes, med tanke på antall store firkanter i rutenettet - 100 og fortynningen av blod - 20.
Hvordan er tellingen av leukocytter
Leukocytrate og abnormiteter
Leukocyttraten hos mennesker er 4,0 - 9,0 × 10 9 / l. Eller forskjellig er omtrent 6000 hvite blodlegemer plassert i 1 kubikkmeter blod.
Eksterne fysiologiske faktorer kan påvirke avvik fra normen:
- matinntak før bloddonasjon;
- stress,
- graviditet eller menstruasjon hos kvinner;
- hypotermi eller overoppheting;
- stor fysisk anstrengelse før testing.
Hvis antall hvite blodlegemer overstiger 9,0 × 10 9 / l (leukocytter er forhøyede), kalles denne tilstanden leukocytose. Et lignende bilde kan ses med ondartede blodsykdommer, infeksjoner, strålingsskader og forgiftning.
Legemidler kan også øke antall leukocytter. Nekrose av vev, tung blødning, inkludert som følge av operasjoner, nyre koma, hjertesykdom - alt dette kan føre til leukocytose.
Fallet i antall leukocytter under 3,9 × 10 9 / l kalles leukopeni. Men hos noen mennesker er et fast antall leukocytter fastsatt til 3,5 × 10 9 / l. Det antas at slike personer opprettholder en reserve av disse cellene i vevet 50 ganger mer enn i blodet. Det er også funksjonell leukopeni etter administrering av smertestillende midler, sulfonamider og andre legemidler, etter lang muskelarbeid, som følge av infeksjon og virus (tyfus, influensa og meslinger).
Leukocytformel
Alle typer leukocytter utgjør leukocytformel. På den kan du identifisere visse patologier. Normen av formelen varierer med alderen og perioden av en persons liv. Skiftet er tydelig synlig hos kvinner under graviditet eller etter fødsel.
Ulike metoder brukes til å beregne forholdet mellom typene av disse cellene, men de er alle knyttet til det faktum at de tyngre cellene (f.eks. Basofiler) ligger nærmere kanten av smeten, og lymfocyttene, som lysceller, forblir i midten.
- Filipchenko metode. I denne metoden utføres beregningen langs den tverrgående rette linjen av grensen fra den ene enden til den andre. Stroppen er mentalt oppdelt i tre deler.
- Schilling metode. Leukocytter regnes i fire områder av et smear.
De oppnådde dataene er registrert i tabellen. Individuelt beregnes antallet av hver type hvite blodlegemer med formlene. Markerte de elementene som kom til syne. Poengsummen holdes til øyeblikket til summen av alle tellte celler er 100.
Metoder for å telle leukocytter i urinen
I urinen beregnes antall leukocytter i cellen Goryaeva Nechiporenko. Denne analysen er nødvendig for å overvåke nyresykdom. Periodisk undersøkelse av urin bidrar til å overvåke korrekt behandling og effektiviteten av den foreskrevne behandlingen.
Urin samling
I studien er bare den første morgenen urin i midten av urinering. Det er viktig for pasienten å følge de grunnleggende reglene for innsamling av dette biomaterialet. Spesiell tilleggsopplæring for studien er ikke nødvendig.
Beregningsmetode
10 ml nyoppsamlet urin blir sentrifugert i tre minutter ved 2,5 tusen omdreininger per minutt. Før dette er det nødvendig å sikre at urinen, for å unngå delvis oppløsning av cellene, har svak syrereaksjon.
Bruk en pipette med en smal, trukket ende, fjern det øvre laget. In vitro forlater fra 0,5 ml urin til 1 ml, avhengig av volumet av sediment.
Bunnfallet blandes forsiktig med supernatanten. Den resulterende løsningen brukes til å fylle Goryaev-tellekammeret i henhold til et lignende prinsipp, som brukes ved beregning av PV av blod. Kameraet er igjen alene i 3 til 5 minutter.
Hvite blodlegemer må regnes i store firkanter over hele gitteret med en 7x okular og en 40x linse.
Den resulterende figuren brukes i formelen:
X = (a / 0,9) × (1000 / V)
X - Antall leukocytter i 1 ml urin.
a - beregnet beløp dividert med volumet av kammeret i 1 μl urinsediment.
v - mengden urin tatt for studien
1000 - mengden av sediment.
Dette er viktig! Leukocytnorm: i 1 ml urin ikke mer enn 2 × 10 3 hvite blodlegemer.
Leukocyttall i blod
Laboratoriepersonalet til å oppdage blodtelling av leukocytter bruker oftest Goryaev-kammeret. Telling av leukocytter i Goryaev-kammeret er en mindre nøyaktig metode enn bestemmelsen av leukocytter ved bruk av elektroniske enheter. Feilens størrelse er ± 7%.
Hvordan er tellingen ferdig
- I røret helles 0,4 milliliter av fortynningsvæsken, så vel som 0,02 milliliter kapillærblod. Klar avl anses å være lik 1:20.
- Som fortynningsvæske brukes vanligvis en 3 eller 5% oppløsning av eddiksyre. Det er forhåndsfarget med metylenblått, som ved reaksjon farger kjernene til leukocytter.
- Før du fyller kammeret, blir Goryaev-røret ristet så grundig som mulig. Fylling av kameraet er det samme som for telling av røde blodlegemer.
Beregningsegenskaper
Av antallet leukocytter betydelig lavere enn røde blodlegemer, er det av denne grunn at beregningen er laget i 100 store firkanter. I 100 kvadrater ble en leukocyttall beregnet.
Med et volum på et lite kvadrat på 14.000 kubikk millimeter og en 20-ganger blodfortynning, beregnes antallet leukocytter som følger: 4000x20, og deretter delt med 1600. Det viser seg 1/2 x a.
For å få et antall hvite blodlegemer i 1 μl, skal den beregnede tallet deles med 2 og legge til to nuller.
Avvik av leukocytter fra nivået indikerer leukocytose og leukopeni, og krever umiddelbar detaljert undersøkelse, siden det er stor sannsynlighet for forekomst av tuberkulose, lungebetennelse, sepsis, tyfusfeber, strålingssykdom.